مطالعات فیزیولوژیکی شامل شاخص های زیر است. روشهای اساسی فیزیولوژی موضوع و وظایف فیزیولوژی. روشهای تحقیق فیزیولوژیکی

فیزیولوژییک علم تجربی است، بنابراین فیزیولوژیست ها در کار خود از انواع مختلفی استفاده می کنند روش های تحقیقات فیزیولوژیکی. فیزیولوژیست با مشاهده و مطالعه پدیده های حیاتی تلاش می کند اولاً به آنها یک ویژگی کمی و کیفی بدهد، یعنی آنها را به طور دقیق توصیف و اندازه گیری کند، به عبارت دیگر آنها را با عدد و اندازه بیان کند و ثانیاً مستند کند. نتایج مشاهدات مستندسازی معمولاً شامل این واقعیت است که ناظر نتایج خود را در قالب پروتکل‌های مشاهده یا فیلم‌ها و عکس‌ها یا به صورت ثبت خودکار تغییرات در فرآیند مورد مطالعه در طول زمان (روی فیلم، کاغذ متحرک، نوار مغناطیسی و غیره) ثابت می‌کند. .).

هم اندازه‌گیری و هم مستندسازی به ابزارها، دستگاه‌ها و دستگاه‌های ویژه‌ای نیاز دارند که با کار تحقیق مطابقت دارند و گاهی اوقات بسیار پیچیده هستند. این امر به این دلیل است که بسیاری از فرآیندها به قدری بی اهمیت هستند و به سرعت رخ می دهند که برای مشاهده و مطالعه آنها و حتی بیشتر برای اندازه گیری آنها به دستگاه های خاصی نیاز است. بنابراین، در قرن گذشته، بسیاری از ابزارهای ثبت و اندازه گیری در آزمایشگاه های فیزیولوژیکی مورد استفاده قرار گرفتند. موفقیت خاصی با تکنیک ابزاری مورد استفاده در تحقیقات فیزیولوژیکی در زمان حاضر به دست آمده است، زمانی که ابزارهای مبتنی بر دستاوردهای فیزیک، شیمی، الکترونیک، اتوماسیون و سایبرنتیک به طور گسترده مورد استفاده قرار می گیرند.

استفاده از روش‌ها و ابزارهای فیزیکی، شیمیایی و فنی توسط فیزیولوژیست‌ها امکان تجهیز آزمایشگاه‌های فیزیولوژیکی را به چنین تجهیزات روش‌شناختی ممکن می‌سازد که به آنها اجازه می‌دهد اطلاعات جامعی در مورد عملکردها و فرآیندهای رخ‌داده در بدن و اندام‌ها، بافت‌ها و سلول‌های آن جمع‌آوری کنند. تجهیزات دقیق و بسیار حساسی که توسط یک فیزیولوژیست مدرن مورد استفاده قرار می گیرد، توانایی های شناختی فرد را بسیار گسترش می دهد، قدرت تفکیک اندام های حسی او را افزایش می دهد و فرآیندهای فیزیولوژیکی بی شماری را در دسترس مشاهده قرار می دهد. با این حال، حتی پیچیده ترین و دقیق ترین روش های مشاهده نیز برای درک ماهیت پدیده های زندگی کافی نیست.

فیزیولوژیست نمی تواند تنها به مشاهده بسنده کند، زیرا تنها به این سؤال پاسخ می دهد که در ارگانیسم چه اتفاقی می افتد. فیزیولوژیست همچنین به دنبال یافتن چگونگی و چرایی فرآیندهای فیزیولوژیکی است. این امر مستلزم آزمایش‌هایی است، آزمایش‌هایی که در آن مشاهدات در شرایط تغییر یافته انجام می‌شوند که توسط خود آزمایش‌کننده ایجاد و تغییر می‌کنند.

در یک مطالعه تجربی از هر فرآیندی در بدن، فیزیولوژیست ها به دنبال ایجاد شرایطی هستند که توسط آن می توان یک فرآیند خاص را القا کرد، آن را تقویت یا تضعیف کرد. به این ترتیب، فیزیولوژیست ها به شناخت عللی که باعث ایجاد این یا آن فرآیند می شوند، شناخت ماهیت آن و روش های کنترل آن می رسند.

اشکال آزمایش فیزیولوژیک متنوع است و بر اساس وظیفه مطالعه تعیین می شود. بنابراین، هنگام تعیین تأثیر محیط خارجی بر روی بدن، در محیطی با ترکیب گاز تغییر یافته هوا یا دما، رطوبت، روشنایی قرار می گیرد. تغذیه بدن را تغییر دهید، آن را در معرض پرتوهای یونیزان قرار دهید. تحت تابش اشعه ماوراء بنفش؛ آن را با سونوگرافی یا برخی عوامل دیگر انجام دهید. در عین حال ، برای دقت تجزیه و تحلیل ، آنها سعی می کنند فقط یک عامل مورد مطالعه را تغییر دهند ، فقط یک اثر را اعمال کنند ، مطالعه ای را انجام دهند ، همانطور که می گویند "ceteris paribus" ، یعنی. در حالی که بدون تغییر تمام شرایط آزمایش، به جز یکی - مورد مطالعه.

فیزیولوژیست ها هنگام تعیین کارکردها و اهمیت در بدن یک اندام، اندام یا بخشی از آن را از بدن خارج می کنند (روش برداشتن، یا از بین بردن) یا عضو را به مکان جدیدی در بدن پیوند می زنند (روش پیوند، یا پیوند) و مشاهده کنید که این چه عواقبی برای بدن دارد. چنین تکنیک هایی به ویژه برای مطالعه غدد درون ریز مفید بوده است. برای ایجاد وابستگی یک اندام به تأثیر سیستم عصبی، رشته های عصبی عصب دهی کننده آن قطع می شوند (تکنیک عصب کشی). برای ایجاد اختلال در اتصال اندام ها با سیستم عروقی، رگ های خونی مختلفی را می بندند (تکنیک لیگاتور) یا رگ های مختلف را با دوختن انتهای مرکزی یکی با انتهای محیطی دیگری به هم متصل می کنند (تکنیک آناستوموز عروقی). برای مطالعه فعالیت برخی از اندام هایی که در عمق بدن قرار دارند و بنابراین از مشاهده مستقیم پنهان هستند، از تکنیک فیستول استفاده می شود. در یکی از انواع آن، یک لوله پلاستیکی یا فلزی به داخل حفره یک اندام، به عنوان مثال، معده، روده، مثانه وارد می شود که انتهای دوم آن بر روی سطح پوست ثابت می شود. در نسخه دیگری از این روش، مجاری غدد به سطح پوست کشیده می شود. در بسیاری از مطالعات در قلب، رگ های خونی، مجاری غدد، لوله های نازکی - کاتترها را معرفی می کنند که به دستگاه های مختلفی برای ثبت عملکرد اندام ها یا برای معرفی مواد خاص (تکنیک کاتتریزاسیون) متصل می شوند. برای تحریک مصنوعی فعالیت اندام ها، فیزیولوژیست ها از روش تحریک توسط تأثیرات الکتریکی، مکانیکی، شیمیایی یا دیگر استفاده می کنند.

اکثر روش های فوق برای مطالعه عملکرد اندام ها نیاز به باز کردن یک موجود زنده یا یک عمل جراحی دارند. آنها در آزمایشات حاد و مزمن استفاده می شوند. در طی آزمایش‌های حاد یا زنده‌کشی، معمولاً کوتاه مدت، حیوان بی‌هوش یا بی‌حرکتی را باز می‌کنند تا عملکرد اندام‌ها را مطالعه کند، تأثیر تحریک اعصاب روی آن‌ها، تجویز مواد دارویی و غیره را مطالعه کند. در آزمایش‌های مزمن، فیزیولوژیست‌ها حیوان را تحت عمل های جراحی مختلف قرار دهید و تحقیقات را پس از اینکه چگونه حیوان پس از انجام عمل جراحی بهبود می یابد، آغاز کنید. اغلب می توان حیوان عمل شده را برای چندین هفته، ماه و سال مشاهده کرد.

عملکرد اندام ها نه تنها در کل ارگانیسم، بلکه در شرایط جدا شدن آنها از ارگانیسم نیز مورد مطالعه قرار می گیرد. برای این منظور، محلول های خاصی از رگ های اندام جدا شده، به عبارت دیگر، جدا شده عبور می کنند، که ترکیب آن توسط آزمایشگر تنظیم می شود (تکنیک پرفیوژن)، و شرایط محیطی لازم برای بافت های زنده ایجاد می شود - یک مقدار مشخص. دما، رطوبت و غیره

همه این روش ها به منظور نفوذ عمیق به ماهیت فرآیندهای رخ داده در بدن هستند. تجزیه و تحلیل آنها در آزمایشات میکروفیزیولوژیکی به سطح یک سلول و حتی قسمت های آن می رسد، زمانی که مثلاً تک ماهیچه، عصب و سایر سلول ها به عنوان اشیا مورد بررسی قرار می گیرند.

وظیفه تحقیقات تحلیلی در فیزیولوژی مطالعه هر فرآیند فیزیولوژیکی است که در هر اندام، بافت یا سلولی جدا شده از سایر فرآیندهای رخ داده در بدن رخ می دهد. در این مورد، فقط در مورد این فرآیند، در مورد عملکرد تنها یک اندام، بافت، سلول، می توان یک ایده جامع به دست آورد. با این حال، این برای آگاهی صحیح و کامل از فعالیت حیاتی یک ارگانیسم کافی نیست. آنچه مورد نیاز است جهت تحقیق است که I. P. Pavlov آن را "فیزیولوژی مصنوعی" نامید و آن را در مقابل "فیزیولوژی تحلیلی" قرار داد که اندام ها، بافت ها و سلول های فردی را مطالعه می کند. وظیفه فیزیولوژی مصنوعی، طبق گفته IP Pavlov، مطالعه ارگانیسم در تمام ارتباطات و روابط آن با محیط خارجی است. در چنین مطالعه ای فیزیولوژیست به دنبال این است که شرایطی را که ارگانیسم مورد مطالعه در آن قرار دارد تا حد امکان به شرایط طبیعی نزدیک کند.

یکی از ویژگی های مهم تحقیقات مصنوعی، مطالعه تمام عملکردهای موجودات جانوران و انسان ها از نقطه نظر شناخت تابعیت آنها از سیستم عصبی است. این جهت تحقیق را اصل عصب گرایی می نامند. این اصل بخشی جدایی ناپذیر از مطالعه مصنوعی ارگانیسم است، زیرا سیستم عصبی با بالاترین بخش خود - تاج های نیمکره های مغز - سیستم بدن است که همه اجزای خود را متحد می کند و رابطه ارگانیسم را با ارگانیسم تعیین می کند. محیط. از اینجا مشخص می شود که شناخت مصنوعی موجودی که دارای سیستم عصبی است تنها در صورتی امکان پذیر است که نقش تنظیم عصبی در نظر گرفته شود.

هدف غالب آزمایشات فیزیولوژیکی حیوانات مختلف هستند. امکان آزمایش بر روی بدن انسان بسیار محدود است، زیرا در این مورد نمی توان تأثیراتی را اعمال کرد که می تواند تأثیر مضری بر آن داشته باشد. علاوه بر این، تا همین اواخر، امکان مشاهده و ثبت بسیاری از فرآیندها در بدن انسان نسبتاً کم بود. زرادخانه روش های تحقیقاتی که فیزیولوژیست در گذشته در آزمایشات روی حیوانات استفاده می کرد، نمی توانست در مطالعه بدن انسان استفاده شود. بنابراین، اطلاعات در مورد عملکرد بسیاری از اندام ها به داده های به دست آمده در آزمایشات روی حیوانات محدود شد. در حال حاضر وضعیت تغییر کرده است.

استفاده فیزیولوژیست ها و پزشکان از دستاوردهای مدرن در فیزیک، مهندسی رادیو، الکترونیک و سایبرنتیک کمک بزرگی در مطالعه عملکرد یک ارگانیسم انسانی سالم و بیمار در دهه های اخیر کرده است. روش های جدید و بهبود یافته قدیمی برای مطالعه توابع ایجاد شده است و مطالعه بسیاری از پدیده ها در بدن انسان بدون آسیب رساندن به آن ممکن شده است. بنابراین، با استفاده از الکترودها بر روی سطح بدن و با استفاده از تجهیزات اندازه گیری الکتریکی، فرآیندهای الکتریکی رخ داده در اندام ها را مطالعه می کنند و بر اساس این داده ها ایده ای از وضعیت و فعالیت سیستم عصبی به دست می آورند. ماهیچه های اسکلتی، قلب و سایر اندام ها. روش های الکتریکی همچنین امکان مطالعه مکانیکی، صوت، دما و سایر فرآیندهای رخ داده در بدن را فراهم می کند.

بزرگترین دستاورد روش شناختی استفاده از تله متری رادیویی در تحقیقات فیزیولوژیکی است، یعنی انتقال اطلاعات فیزیولوژیکی از راه دور به وسیله ارتباط رادیویی با شی مورد مطالعه. برای انجام این کار، دستگاهی به شخص یا حیوانی اعمال می شود که پدیده مورد مطالعه را درک می کند، به اصطلاح حسگر. این دستگاه به یک فرستنده رادیویی مخصوصی که روی شخص یا حیوان مورد معاینه یا نزدیک آن قرار می گیرد متصل می شود. تحت تأثیر یک فرآیند فیزیولوژیکی خاص، پارامترهای الکتریکی سنسور تغییر می کند، که باعث تغییر در فرکانس یا دامنه نوسانات الکترومغناطیسی با فرکانس بالا ساطع شده توسط فرستنده رادیویی می شود. سیگنال های آن توسط گیرنده رادیویی درک شده و در فاصله ای از سوژه ضبط می شود. به این ترتیب، فرآیندهای فیزیولوژیکی، به عنوان مثال، در حین حرکت کارگری یا تمرینات ورزشی مورد مطالعه قرار می گیرند. از تله متری رادیویی نیز برای مطالعه وضعیت انسان در طول پروازهای فضایی استفاده می شود.

برای مطالعه عملکرد یک ارگانیسم انسانی در یک حیوان، ثبت همزمان بسیاری از فرآیندهای فیزیولوژیکی، فیزیکی و شیمیایی که در سلول‌ها، اندام‌ها و سیستم‌های مختلف رخ می‌دهند بسیار مهم است. تکنولوژی مدرن این امکان را فراهم کرده است. در این مورد، یک کار دشوار برای پردازش سریع نتایج مشاهده بسیاری از فرآیندهای مختلف و شناسایی روابط منظم آنها بوجود آمد. در سال‌های اخیر، فیزیولوژیست‌ها شروع به استفاده از دستگاه‌های الکترونیکی برای تجزیه و تحلیل و پردازش اطلاعات فیزیولوژیکی کرده‌اند که نتایج مهم جدیدی را به همراه داشته است.

روش های تشخیص حالات عملکردی

تشخیص شرایط انسان برای بسیاری از زمینه های زندگی و کار او مهم است. در روانشناسی کار، ورزش، روانشناسی نظامی و فضایی، به چند دلیل توصیه می شود که بدانیم فرد در چه وضعیتی است. اولاً برای ارزیابی سطح فعالیت، رفاه او. ثانیاً به منظور پیش‌بینی سطح ظرفیت کاری وی و یا اتخاذ تدابیری برای افزایش آن از طریق تنظیم وضعیت منفی به وجود آمده، یا تصمیم به توقف فعالیت به منظور حفظ سلامت انسان یا جلوگیری از پیامدهای منفی وضعیت بوجود آمده است. در زمینه ارتباطات حرفه ای و آموزشی، در فرآیند مذاکره، شناخت وضعیت عاطفی شریک ارتباطی برای انتخاب اشکال و روش های درمانی مناسب و اجتناب از تعارض مهم است.

تمام روش های مطالعه حالات روانی فیزیولوژیکی را می توان به گروه های زیر تقسیم کرد:

1) مشاهده رفتار و بیان انسان.

2) سؤال از شخص در مورد تجربیات خود در لحظه؛

3) اندازه گیری پارامترهای فیزیولوژیکی: ضربان قلب و تنفس، تبادل گاز، EEG و غیره. (شکل 10)

4) اندازه گیری شاخص های روانی (زمان واکنش، تمرکز و تغییر توجه و غیره)؛

5) تثبیت طولانی مدت اثربخشی فعالیت ها.

با یک تقسیم بندی کلی تر، تمام روش های روان-فیزیولوژیکی برای مطالعه حالات عملکردی یک فرد را می توان به روش های فیزیولوژیکی و روان شناختی تقسیم کرد.

از زمان ظهور مطالعات روان‌فیزیولوژیکی، واکنش‌های رویشی بیشترین استفاده را در انجام آنها داشته و دارند: تغییر در هدایت پوست، واکنش‌های عروقی، ضربان قلب، فشار خون و غیره. با این حال، ثبت واکنش‌های رویشی برای روش‌های مستقیم اعمال نمی‌شود. اندازه گیری فرآیندهای اطلاعاتی مغز به احتمال زیاد، آنها برخی از خصوصیات خلاصه و غیر اختصاصی فرآیندهای اطلاعاتی را نشان می دهند. علاوه بر این، همان واکنش رویشی (به عنوان مثال، رفلکس پوست گالوانیکی - GSR) می تواند با فرآیندهای اطلاعاتی با محتوای بسیار متفاوت مرتبط باشد. ظاهر GSR را می توان هم با افزایش توجه و هم با واکنش دفاعی مشاهده کرد. با این حال، با توجه به برخی از واکنش های رویشی، رفلکس های مختلف را می توان متمایز کرد. بنابراین، F. Graham و R. Clifton پیشنهاد کردند که از واکنش فازیک کاهش ضربان قلب به عنوان نشانه ای استفاده کنند که رفلکس جهت گیری را از واکنش دفاعی متمایز می کند. در مورد دوم، ضربان قلب در جهت مخالف تغییر می کند، یعنی افزایش می یابد.

دلایل متعددی وجود دارد که چرا واکنش های خودمختار را می توان تنها به عنوان یک روش غیر مستقیم برای مطالعه فرآیندهای اطلاعاتی مورد استفاده قرار داد:

آنها بسیار کند و با تاخیر هستند.

ارتباط بسیار نزدیک با تغییرات در وضعیت عملکردی و احساسات؛

آنها از نظر مشوق ها و وظایف غیر اختصاصی هستند.

با این حال، این بدان معنا نیست که پارامترهای رویشی بسیار حساس نیستند. بنابراین، در حین گوش دادن دوگانه، محرک های قابل توجهی (با تلفظ نام سوژه)، اگرچه از طریق یک کانال شنوایی نادیده گرفته می شوند، یعنی با توجه داوطلبانه کنترل نمی شوند، اغلب باعث GSR می شوند.

شکل 10. ضبط چند کاناله از متداول‌ترین نوع فعالیت‌های بیوالکتریکی انسان (Paillard, 1970).

برخی از مزیت ها نسبت به واکنش های رویشی ثبت فعالیت الکتریکی عضلات - الکترومیوگرام (EMG) است که با تحرک بالا مشخص می شود. علاوه بر این، حالات احساسی مختلف را می توان با درجه بالایی از دقت از برخی الگوهای EMG خاص ثبت شده از عضلات صورت شناسایی کرد. ثبت حرکات چشم (اکولوگرام) در ارگونومی کاربرد دارد. برای اهداف امنیتی، از این نشانگر برای نظارت بر وضعیت رانندگانی استفاده می شود که برای مدت طولانی در حال رانندگی با ماشین یا لوکوموتیو بوده اند.

الکتروانسفالوگرافی.

در سایکوفیزیولوژی سنتی، روش ثبت فعالیت الکتریکی مغز، الکتروانسفالوگرام (EEG) نیز به طور گسترده مورد استفاده قرار می گیرد. فعالیت الکتریکی خود به خودی مغز با ریتم های خاصی با فرکانس و دامنه مشخص مشخص می شود و می تواند به طور همزمان از بسیاری از قسمت های جمجمه ثبت شود. این امکان مطالعه الگوهای EEG خاص فضایی و ارتباط آنها با عملکردهای ذهنی بالاتر را فراهم می کند.

EEG نوسانات زمان اختلاف پتانسیل بین دو الکترود را منعکس می کند. ریتم های مغزی زیر متمایز می شوند:

ریتم آلفا با فرکانس 8-13 هرتز و دامنه 5-100 μV - عمدتاً در ناحیه اکسیپیتال و جداری ثبت می شود.

ریتم بتا دارای فرکانس 18-30 هرتز و دامنه نوسان حدود 2-20 μV است - در قشر پیش مرکزی و پیشانی موضعی است.

نوسانات گاما دارای فرکانس 30-120-170 هرتز هستند و به گفته برخی از نویسندگان - تا 500 هرتز با دامنه حدود 2 μV - می توان آنها را در نواحی پیش مرکزی، پیشانی، جداری زمانی و مناطق خاص قشر مشاهده کرد.

امواج دلتا در محدوده 0.5-4.0 هرتز رخ می دهند، دامنه آنها 20-200 μV است - منطقه ظاهر آنها متفاوت است.

امواج تتا دارای فرکانس 4-7 هرتز و دامنه 5-100 μV هستند - آنها بیشتر در مناطق جلویی مشاهده می شوند.

نوسانات کاپا دارای فرکانس 8-12 هرتز و دامنه 5-40 μV هستند - آنها در ناحیه زمانی مشاهده می شوند.

نوسانات لامبدا دارای فرکانس 12-14 هرتز، دامنه 20-50 میکروولت هستند - تمرکز آنها روی راس قرار می گیرد.

دوک های خواب دارای فرکانس 12-14 هرتز و منطقه گسترده ای از توزیع هستند.

معادل‌های ریتم آلفا نیز متمایز می‌شوند که فرکانس نوسانی مشابه با ریتم آلفا دارند، اما محلی‌سازی متفاوتی دارند و به انواع دیگر مدالیته حساس هستند. در ناحیه شیار رولند، یک مو ریتم (رولاندی یا کمانی) ثبت می شود که با محاصره به محرک های حس عمقی پاسخ می دهد. ریتم تاو در قشر تمپورال یافت می شود که توسط محرک های صوتی سرکوب می شود.

با توسعه فناوری رایانه، روش های تحلیل طیفی و همبستگی EEG گسترده شده است.

الگوی EEG با انتقال به خواب و با تغییر در وضعیت عملکردی در بیداری، در طول تشنج صرع تغییر می کند. EEG برای شناسایی موارد با از دست دادن هوشیاری مفید است.

مگنتوآنسفالوگرافی

میدان های بیولوژیکی مغز و اندام های مختلف بسیار کوچک هستند. میدان مغناطیسی قلب انسان حدود یک میلیونم میدان مغناطیسی زمین است و بدن انسان 100 برابر ضعیف تر است. میدان مغناطیسی قلب انسان برای اولین بار در سال 1963 ثبت شد. اولین تغییرات در EMF مغز انسان توسط D. Coen از موسسه فناوری ماساچوست در سال 1968 انجام شد. او با استفاده از روش مغناطیسی، ریتم آلفای خود به خودی را در افراد سالم و تغییری در فعالیت مغز در بیماران صرعی ثبت کرد.

مگنتوآنسفالوگرام (MEG) مزایای زیادی نسبت به EEG دارد:

1) روش ثبت نام بدون تماس؛

2) MEG از پوست، چربی زیر جلدی، استخوان‌های جمجمه، سخت‌شکم، خون و غیره دچار اعوجاج نمی‌شود، زیرا نفوذپذیری مغناطیسی برای هوا و بافت‌ها تقریباً یکسان است.

3) MEG تعیین محل فقط دوقطبی های قشر مغز را امکان پذیر می کند، در حالی که EEG سیگنال های همه منابع را بدون توجه به جهت آنها خلاصه می کند، که جداسازی آنها را دشوار می کند.

4) MEG به الکترود بی تفاوت نیاز ندارد و مشکل انتخاب مکانی برای یک سرب واقعا غیر فعال را برطرف می کند.

با توجه به حساسیت متفاوت EEG و MEG به منابع فعالیت، استفاده ترکیبی از آنها به ویژه مفید است.

اندازه گیری جریان خون موضعی مغزی.

بافت مغز منابع انرژی خود را ندارد و به تامین مستقیم اکسیژن و گلوکز از طریق خون بستگی دارد. بنابراین، افزایش جریان خون موضعی می تواند به عنوان نشانه غیرمستقیم فعال شدن موضعی مغز مورد استفاده قرار گیرد. این روش در دهه 50 و اوایل دهه 60 توسعه یافت. این بر اساس اندازه گیری میزان شسته شدن ایزوتوپ های زنون یا کریپتون (ترخیص ایزوتوپ) یا اتم های هیدروژن (ترخیص هیدروژن) از بافت های مغز است. سرعت شستشوی برچسب رادیواکتیو به طور مستقیم با شدت جریان خون مرتبط است. هر چه جریان خون در ناحیه خاصی از مغز شدیدتر باشد، محتوای برچسب رادیواکتیو سریعتر در آن جمع می شود و سریعتر شسته می شود. افزایش جریان خون با افزایش سطح فعالیت متابولیک مغز مرتبط است. برچسب با استفاده از دوربین گاما چند کاناله ثبت می شود. از کلاه ایمنی با سنسورهای مخصوص سوسوزن (تا 254 قطعه) استفاده کنید. ایزوتوپ‌ها یا مستقیماً به جریان خون تزریق می‌شوند (سپس می‌توان تنها یک نیمکره مرتبط با شریان کاروتید را که تزریق در آن انجام شده است بررسی کرد)، یا به‌صورت غیرتهاجمی از طریق دستگاه تنفسی (ایزوتوپ از طریق سیستم تنفسی وارد جریان خون می‌شود. به مغز می رسد، سپس برچسب از مغز خارج می شود). در روش دوم، برچسب به دو نیمکره گسترش می یابد.

هنگام اندازه‌گیری کلیرانس هیدروژن، یک سری الکترودهای فلزی در مغز کاشته می‌شوند تا تغییر پتانسیل الکتروشیمیایی را که با اسیدی کردن بافت‌ها با یون‌های هیدروژن ایجاد می‌شود، ثبت کنند. با توجه به سطح آن، فعالیت یک بخش محلی از مغز قضاوت می شود. این روش برای اهداف پزشکی بر روی انسان استفاده می شود: برای روشن شدن تشخیص بالینی تومورها، سکته ها و جراحات.

نقطه ضعف قابل توجه این روش ها وضوح زمانی کم آنهاست. هر اندازه گیری حدود دو دقیقه طول می کشد. بنابراین، تکنیک اندازه‌گیری جریان خون مغزی موضعی برای ارزیابی تغییرات تونیک یا مشخص کردن فعالیت پس‌زمینه مغز خوب است و برای مطالعه دینامیک آن کاربرد کمی دارد.

روش های توموگرافی تحقیق مغز.

ماهیت روش های تحقیق توموگرافی به دست آوردن بخش هایی از مغز به صورت مصنوعی است. برای ساخت بخش‌ها، از تابش نور، به عنوان مثال، اشعه ایکس، یا تابش از مغز که از ایزوتوپ‌هایی که قبلاً وارد مغز شده‌اند، استفاده می‌شود. اصل دوم در توموگرافی انتشار پوزیترون (PET) استفاده می شود.

اصل کلی توموگرافی در سال 1927 توسط فیزیکدان اتریشی J. Rodon که با مشکل گرانش سروکار داشت، فرموله شد. او ثابت کرد که با داشتن مجموعه‌ای از تصاویر برش‌های یک شی، می‌توان تصویری از آن برش‌هایی که در ابتدا به دست نیامده‌اند به دست آورد. عملیاتی که در طول توموگرافی انجام می شود تبدیل مستقیم و معکوس رادون نامیده می شود: توصیف یک شی با مجموعه ای از تصاویر تبدیل مستقیم راودون است، بازیابی کل ساختار داخلی جسم از مجموعه ای از برجستگی های آن تبدیل معکوس است.

توموگرافی ساختاری و عملکردی وجود دارد. توموگرافی اشعه ایکس به ساختاری اشاره دارد. PET که روش درون حیاتی نقشه برداری ایزوتوپ عملکردی مغز نیز نامیده می شود، به عملکردی اشاره دارد.

روش تصویربرداری رزونانس مغناطیسی.

در چند سال گذشته بر اساس روش های تصویربرداری رزونانس مغناطیسی (MRI) که برای اولین بار برای توموگرافی ساختاری استفاده شد - به دست آوردن نقشه ساختارهای مغز بر اساس تضاد ماده سفید و خاکستری، MRI عملکردی ظاهر شد. تکنیک MRI عملکردی (fMRI) مبتنی بر استفاده از خواص پارامغناطیس آن دسته از عواملی است که می توانند به بدن وارد شوند. چنین عواملی خواص مغناطیسی ندارند، اما آنها را تنها زمانی به دست می آورند که وارد میدان مغناطیسی شوند. MRI عملکردی از مواد پارامغناطیس هموگلوبین استفاده می کند. fMRI توزیع فضایی هموگلوبین را که اکسیژن آزاد (دئوکسی هموگلوبین) را از دست داده است، به طور دقیق تر، نسبت دئوکسی هموگلوبین به هموگلوبین را اندازه گیری می کند. وقتی هموگلوبین اکسیژن را از دست می دهد، پارامغناطیس می شود. هنگامی که بدن فعال می شود، فعالیت متابولیک مغز افزایش می یابد. این به دلیل افزایش حجم و سرعت جریان خون مغزی است. هجوم اضافی اکسیژن به بخشی از مغز منجر به کاهش غلظت دئوکسی هموگلوبین پارامغناطیس در آن می شود. وجود بسیاری از مکان‌های فعال‌سازی در توزیع نابرابر دی‌اکسی هموگلوبین در مغز منعکس می‌شود که ناهمگونی میدان مغناطیسی را ایجاد می‌کند که برای به دست آوردن نقشه‌های فعال‌سازی محلی استفاده می‌شود. MRI عملکردی به شما امکان می دهد مناطقی از مغز را با سلول های عصبی فعال شناسایی کنید. این روش جایگزین PET می شود زیرا نیازی به ایزوتوپ ندارد و وضوح زمانی آن بیشتر از PET (صدها میلی ثانیه) است.

ترموآنسفالوسکوپی

این روش متابولیسم موضعی مغز و جریان خون تولید گرمای آن را اندازه گیری می کند. مغز پرتوهای گرمایی در محدوده مادون قرمز ساطع می کند. بخار آب موجود در هوا بخش قابل توجهی از این تابش را مسدود می کند. اما دو محدوده فرکانسی (3-5 و 8-14 میکرون) وجود دارد که در آنها پرتوهای حرارتی در اتمسفر در فواصل بسیار زیاد منتشر می شوند و بنابراین می توان آنها را ثبت کرد. این روش در موسسه فعالیت عصبی عالی و فیزیولوژی عصبی آکادمی علوم روسیه و موسسه رادیوالکترونیک توسعه داده شد. تابش مادون قرمز مغز در فاصله چند سانتی متری تا یک متری توسط تصویرگر حرارتی با سیستم اسکن خودکار گرفته می شود. سیگنال ها به سنسورهای نقطه ای ارسال می شوند. هر نقشه حرارتی شامل 10-16 هزار نقطه گسسته است که ماتریسی از 128x85 یا 128x128 نقطه را تشکیل می دهد. روند اندازه گیری در یک نقطه 2.4 میکرو ثانیه طول می کشد. در یک مغز در حال کار، دمای هر نواحی به طور مداوم در حال تغییر است. ساختن یک نقشه حرارتی برش زمانی از فعالیت متابولیک مغز را نشان می دهد.

یک روش واحد برای استفاده از توموگرافی برای مطالعه عملکردهای ذهنی بالاتر مغز وجود دارد. این شامل فرآیند تفریق نقشه فعالیت مغز به دست آمده در طی یک عملیات شناختی کمتر پیچیده از نقشه فعالیت مربوط به عملکرد ذهنی پیچیده تر است. این روش همچنین برای پردازش داده های استخراج شده با روش نقشه برداری مغز با استفاده از پارامترهای EEG قابل استفاده است. این امر به ویژه هنگام ترکیب دو روش تجزیه و تحلیل ارزشمند است: PET و EEG، MRI و EEG - روند جدیدی در استفاده از این روش ها در حال ظهور است.

به عنوان شاخص های ممکن پویایی حالت های عملکردی، طیف گسترده ای از شاخص های کار سیستم عصبی مرکزی و تغییرات رویشی در نظر گرفته می شود. تغییرات در پارامترهای فعالیت الکتریکی مغز به طور سنتی به عنوان یک شاخص مستقیم از سطح فعال سازی در نظر گرفته می شود.

از جمله آموزنده ترین شاخص های پویایی حالت های عملکردی می توان به پارامترهای مختلف فعالیت سیستم های قلبی عروقی و تنفسی اشاره کرد: ضربان قلب، فشار خون، وضعیت قسمت های مختلف بستر عروقی، فراوانی و عمق تنفس و غیره. ایجاد حالت های تنش و خستگی مرتبط با افزایش هزینه های انرژی، منجر به افزایش ضربان قلب، افزایش تبادل گاز و سایر پارامترها می شود که نشان دهنده تغییرات در تعادل انرژی بدن است.

تجزیه و تحلیل پویایی سایر شاخص های رویشی: دمای بدن، عملکرد سیستم گوارشی و دفعی و غیره، معمولاً برای مشخص کردن تغییرات تونیک غیرارادی در سطح فعال سازی در طول، به عنوان مثال، چرخه روزانه استفاده می شود.

حوزه گسترده ای از تحقیقات به مطالعه ویژگی های تغییرات هورمونی که تحت تأثیر بارها و شرایط مختلف فعالیت رخ می دهد اختصاص داده شده است. با وجود مشکلات فنی قابل توجه در ارزیابی آنها، تعداد روش های توسعه یافته و در حال حاضر در عمل مربوطه به طور مداوم در حال افزایش است. علاوه بر مطالعه پویایی کمی ترشح هورمون های مختلف به عنوان شاخص های ریتم روزانه، تعداد زیادی از مطالعات به شناسایی ویژگی های تغییرات هورمونی در موقعیت های مختلف رفتاری اختصاص یافته است. به عنوان تنظیم کننده های معمول افزایش تنش و استرس، معمولاً افزایش محتوای 17 هیدروکسی کورتیکواستروئیدها، "هورمون های استرس" - آدرنالین و نوراپی نفرین، در خون و ادرار یک فرد شاغل نشان داده می شود.

شکی نیست که بار و تغییرات در قابلیت های عملکردی بدن با پویایی پارامترهای فیزیولوژیکی همراه است. متأسفانه، عوامل زیادی وجود دارد که بر پارامترهای ثبت شده مشابه به روشی مشابه تأثیر می گذارد.

در این راستا، هنگام حل مشکلات تشخیصی، مشکل تفاوت های فردی یکی از اصلی ترین آنها می شود. انواع پاسخ های فیزیولوژیکی (الگوهای واکنش) در یک موقعیت خاص به طور گسترده ای از فردی به فرد دیگر متفاوت است. در عین حال، شواهدی از ثبات نسبی نوع واکنش ها در یک فرد در شرایط ثابت وجود دارد. اگر بتوان یک "سطح اولیه" مشخص را برای یک فرد خاص تعیین کرد، می توان پویایی وضعیت عملکردی او را ردیابی کرد و به اصطلاح "پروفایل شخصیت فیزیولوژیکی" را ساخت.

استفاده از شاخص های فیزیولوژیکی برای اهداف تشخیصی به دلیل مشکلات اندازه شناسی قابل توجهی محدود شده است. علیرغم سادگی نسبی (این در مورد تکنیک تحقیق پیچیده و فرآیند پر زحمت بیشتر پردازش آماری نتایج صدق نمی کند) اندازه گیری کمی مستقیم تغییرات در عملکردهای فیزیولوژیکی مشاهده شده در آزمایش، محقق با تعدادی از مشکلات مواجه است. اینها شامل وظایف ایجاد و انتخاب ابزارهای نظری تجزیه و تحلیل مناسب با مواد مورد مطالعه (مدل های ریاضی و طرح های مفهومی) است. علاوه بر این، تعدادی از مشکلات اندازه‌شناسی مشترک در همه انواع اندازه‌گیری‌های فیزیولوژیکی وجود دارد که عمده‌ترین آنها مشکلات سطح مرجع عملکرد و غیرخطی بودن مقیاس‌های اندازه‌گیری است.

این حقایق، و همچنین نقص روش‌شناختی مداوم رویه‌های ثبت و پردازش داده‌های فیزیولوژیکی، مشکلات واقعی را در استفاده از این شاخص‌ها برای تشخیص حالت‌های عملکردی در شرایط واقعی ایجاد می‌کند.

روشهای تحقیق در فیزیولوژی

برای مطالعه فرآیندها و عملکردهای مختلف یک موجود زنده در فیزیولوژی، از روش‌های مشاهده و آزمایش استفاده می‌شود.

روش مشاهده ماهیت این روش ارزیابی تظاهرات یک فرآیند فیزیولوژیکی خاص، عملکرد یک اندام یا بافت در شرایط طبیعی است. این اولین روشی است که در یونان باستان ایجاد شد. در مصر، هنگام مومیایی کردن، اجساد را باز می کردند و کشیش ها وضعیت اندام های مختلف را در ارتباط با داده های ثبت شده قبلی در مورد ضربان نبض، کمیت و کیفیت ادرار و سایر شاخص ها در افرادی که مشاهده می کردند، تجزیه و تحلیل می کردند.

در حال حاضر، دانشمندان، با انجام مطالعات مشاهده ای، از تعدادی دستگاه ساده و پیچیده (تحمیل فیستول، کاشت الکترود) در زرادخانه خود استفاده می کنند که امکان تعیین دقیق تر مکانیسم عملکرد اندام ها و بافت ها را فراهم می کند. مثلاً با مشاهده فعالیت غده بزاقی می توان میزان ترشح بزاق در یک بازه زمانی معین از روز، رنگ، تراکم و ... را مشخص کرد.

با این حال، مشاهده یک پدیده به این سؤال پاسخ نمی دهد که این یا آن فرآیند یا عملکرد فیزیولوژیکی چگونه انجام می شود.

روش مشاهده ای بیشتر در روانشناسی جانورشناسی و اخلاق شناسی استفاده می شود.

روش تجربی. آزمایش فیزیولوژیکی یک مداخله هدفمند در بدن یک حیوان به منظور کشف تأثیر عوامل مختلف بر عملکردهای فردی آن است. چنین مداخله‌ای گاهی نیاز به آماده‌سازی جراحی حیوان دارد که ممکن است به شکل حاد (ویویزکشن) یا مزمن (جراحی تجربی) باشد. بنابراین، آزمایش ها به دو نوع حاد (ویویسکتور) و مزمن تقسیم می شوند.

روش تجربی، بر خلاف روش مشاهده، به شما امکان می دهد دلیل اجرای یک فرآیند یا عملکرد را دریابید.

زنده گیریدر مراحل اولیه توسعه فیزیولوژی بر روی حیوانات بی حرکت بدون استفاده از بیهوشی انجام شد. اما از قرن 19 در آزمایش حاد از بیهوشی عمومی استفاده شد.

آزمایش حادمحاسن و معایب خاص خود را دارد. از مزایای آن می توان به توانایی شبیه سازی موقعیت های مختلف و به دست آوردن نتایج در زمان نسبتاً کوتاه اشاره کرد. معایب شامل این واقعیت است که در یک آزمایش حاد، هنگام استفاده از بیهوشی عمومی، تأثیر سیستم عصبی مرکزی بر بدن حذف می شود و یکپارچگی پاسخ بدن به تأثیرات مختلف نقض می شود. علاوه بر این، حیوانات اغلب باید پس از یک آزمایش حاد کشته شوند.

بنابراین روش های بعدی توسعه یافت آزمایش مزمن، که در آن نظارت طولانی مدت حیوانات پس از جراحی و بهبودی حیوان انجام می شود.

آکادمیسین I.P. پاولوف روشی را برای اعمال فیستول در اندام های توخالی (معده، روده، مثانه) ابداع کرد. استفاده از تکنیک فیستول باعث شد تا مکانیسم های عملکرد بسیاری از اندام ها مشخص شود. در شرایط استریل، حیوان بیهوش شده تحت یک عمل جراحی قرار می گیرد که امکان دسترسی به یک اندام داخلی خاص را فراهم می کند، لوله فیستول کاشته می شود یا مجرای غده برداشته می شود و به پوست بخیه می شود. خود آزمایش پس از بهبود زخم پس از عمل و بهبودی حیوان، زمانی که فرآیندهای فیزیولوژیکی به حالت عادی باز می گردد، آغاز می شود. به لطف این تکنیک، مطالعه تصویر فرآیندهای فیزیولوژیکی در شرایط طبیعی برای مدت طولانی امکان پذیر شد.

روش آزمایشی، مانند روش مشاهده، شامل استفاده از تجهیزات مدرن ساده و پیچیده است، دستگاه هایی که در سیستم های طراحی شده برای تأثیرگذاری بر یک شی و ثبت مظاهر مختلف فعالیت حیاتی طراحی شده اند.

اختراع کیموگراف و توسعه روشی برای ثبت گرافیکی فشار خون توسط دانشمند آلمانی K. Ludwig در سال 1847 مرحله جدیدی را در توسعه فیزیولوژی باز کرد. کیموگراف امکان انجام یک ضبط عینی از فرآیند مورد مطالعه را فراهم کرد.

بعدها روش هایی برای ثبت انقباض قلب و ماهیچه ها (T. Engelman) و روشی برای ثبت تغییرات تون عروق (پلتیسموگرافی) ایجاد شد.

هدف، واقعگرایانه ثبت گرافیکیپدیده های بیوالکتریک به لطف گالوانومتر رشته ای که توسط فیزیولوژیست هلندی Einthoven اختراع شد امکان پذیر شد. او اولین کسی بود که نوار قلب را روی فیلم ضبط کرد. ثبت گرافیکی پتانسیل های بیوالکتریک به عنوان پایه ای برای توسعه الکتروفیزیولوژی عمل کرد. در حال حاضر، الکتروانسفالوگرافی به طور گسترده در عمل و تحقیقات علمی استفاده می شود.

گام مهمی در توسعه الکتروفیزیولوژی اختراع میکروالکترودها بود. با کمک میکرومانیپلاتورها می توان آنها را مستقیماً به داخل سلول تزریق کرد و پتانسیل های بیوالکتریک را ثبت کرد. تکنیک میکروالکترود رمزگشایی مکانیسم های تولید پتانسیل زیستی در غشای سلولی را ممکن کرد.

فیزیولوژیست آلمانی Dubois-Reymond بنیانگذار روش تحریک الکتریکی اندام ها و بافت ها با استفاده از سیم پیچ القایی برای تحریک الکتریکی دوز بافت های زنده است. در حال حاضر برای این کار از محرک های الکترونیکی استفاده می شود که به شما امکان می دهد تکانه های الکتریکی با هر فرکانس و قدرتی را دریافت کنید. تحریک الکتریکی به روشی مهم برای مطالعه عملکرد اندام ها و بافت ها تبدیل شده است.

روش های تجربی شامل بسیاری از روش های فیزیولوژیکی می باشد.

حذف(از بین رفتن) یک عضو، به عنوان مثال، یک غده درون ریز خاص، به شما امکان می دهد تأثیر آن را بر اندام ها و سیستم های مختلف حیوان بیابید. برداشتن قسمت‌های مختلف قشر مغز به دانشمندان این امکان را داد تا تأثیر آن‌ها را بر بدن دریابند.

پیشرفت های مدرن در فیزیولوژی به دلیل استفاده از فناوری الکترونیک بود.

کاشت الکتروددر قسمت های مختلف مغز به ایجاد فعالیت مراکز عصبی مختلف کمک کرد.

مقدمه ایزوتوپ های رادیواکتیوورود به بدن به دانشمندان اجازه می دهد تا متابولیسم مواد مختلف در اندام ها و بافت ها را مطالعه کنند.

روش توموگرافیاستفاده از رزونانس مغناطیسی هسته ای برای روشن کردن مکانیسم های فرآیندهای فیزیولوژیکی در سطح مولکولی بسیار مهم است.

بیوشیمیاییو بیوفیزیکیروش ها به شناسایی متابولیت های مختلف در اندام ها و بافت ها در حیوانات در حالت طبیعی و در آسیب شناسی با دقت بالا کمک می کنند.

آگاهی از ویژگی های کمی فرآیندهای فیزیولوژیکی مختلف و ارتباط بین آنها، ایجاد و x مدل های ریاضیبا کمک این مدل‌ها، فرآیندهای فیزیولوژیکی در رایانه بازتولید می‌شوند و انواع مختلفی از واکنش‌ها بررسی می‌شوند.

سوالات و وظایف را کنترل کنید

• 1. اهداف و مقاصد علم فیزیولوژی را نام ببرید.
• 2. مراحل اصلی توسعه علم فیزیولوژی را به یاد بیاورید.
• 3. چه روش های تحقیقی در فیزیولوژی استفاده می شود؟
• 4. ابزار اصلی مورد استفاده در تحقیقات فیزیولوژیکی را نام ببرید.
• 5. کیموگراف برای چه منظوری استفاده می شود؟
• 6. نام فیزیولوژیست های معروف روسی را به خاطر بسپارید.
• 7. تفاوت بین آزمایش حاد و مزمن را توضیح دهید.

روشهای تحقیق فیزیولوژیک

فیزیولوژی علمی است که مکانیسم های عملکرد یک موجود زنده را در رابطه آن با محیط مطالعه می کند (این علم زندگی یک موجود زنده است)، فیزیولوژی یک علم تجربی است و روش های اصلی علم فیزیولوژی روش های تجربی هستند. با این حال، فیزیولوژی به عنوان یک علم حتی قبل از دوران ما در یونان باستان در مدرسه بقراط، زمانی که روش اصلی تحقیق روش مشاهده بود، در علم پزشکی سرچشمه گرفت. فیزیولوژی در قرن پانزدهم به لطف تحقیقات هاروی و تعدادی دیگر از دانشمندان علوم طبیعی به عنوان یک علم مستقل ظهور کرد و از اواخر قرن پانزدهم تا اوایل قرن شانزدهم روش اصلی در زمینه فیزیولوژی روش آزمایش که در. سچنوف و I.P. پاولوف سهم قابل توجهی در توسعه روش شناسی در زمینه فیزیولوژی، به ویژه در توسعه یک آزمایش مزمن داشت.

ادبیات:

1. فیزیولوژی انسان. کوسیتسکی

2. کوربکوف. فیزیولوژی طبیعی

3. زیمکین. فیزیولوژی انسان.

4. فیزیولوژی انسان، ویرایش. پوکروفسکی V.N.، 1998

5. فیزیولوژی GNI. کوگان.

6. فیزیولوژی انسان و حیوانات. کوگان. 2 تن

7. اد. Tkachenko P.I. فیزیولوژی انسان. 3 تن

8. اد. نوزدروچف. فیزیولوژی. دوره عمومی. 2 تن

9. اد. کورایف. 3 v. کتاب درسی ترجمه شده؟ فیزیولوژی انسان.

روش مشاهده قدیمی ترین روش است که در Dr. یونان، در مصر به خوبی توسعه یافته بود، بر اساس دکتر. شرق، تبت، چین. ماهیت این روش در مشاهده طولانی مدت تغییرات اعمال و حالات بدن، رفع این مشاهدات و در صورت امکان مقایسه مشاهدات بصری با تغییرات بدن پس از باز شدن است. در مصر، هنگام مومیایی کردن، اجساد را باز می کردند، مشاهدات کشیش از بیمار: تغییر در پوست، عمق و تعداد دفعات تنفس، ماهیت و شدت ترشحات از بینی، دهان و همچنین حجم و رنگ ادرار. شفافیت آن، مقدار و ماهیت مدفوع دفع شده، رنگ آن، ضربان نبض و سایر شاخص‌ها که با تغییرات اندام‌های داخلی مقایسه شد، روی پاپیروس ثبت شد. بنابراین، در حال حاضر با تغییر مدفوع، ادرار، خلط و غیره دفع شده توسط بدن. می توان در مورد نقض عملکرد یک یا آن عضو قضاوت کرد، به عنوان مثال، اگر مدفوع سفید باشد، فرض بر این است که نقض عملکرد کبد مجاز است، اگر مدفوع سیاه یا تیره باشد، پس از آن است. احتمال خونریزی معده یا روده وجود دارد. تغییر در رنگ و تورگ پوست، تورم پوست، شخصیت آن، رنگ صلبیه، تعریق، لرزش و غیره به عنوان یک معیار اضافی عمل می کرد.

بقراط ماهیت رفتار را به نشانه های مشاهده شده نسبت داد. به لطف مشاهدات دقیق خود، او دکترین خلق و خو را تدوین کرد که بر اساس آن کل بشریت با توجه به ویژگی های رفتاری به 4 نوع تقسیم می شود: وبا، روان، بلغم، سودا، اما بقراط در توجیه فیزیولوژیکی انواع اشتباه می کرد. . هر نوع بر اساس نسبت مایعات اصلی بدن بود: سنگوی - خون، بلغم - مایع بافتی، وبا - صفرا، مالیخولا - صفرای سیاه. اثبات نظری علمی مزاج ها توسط پاولوف در نتیجه مطالعات تجربی طولانی ارائه شد و مشخص شد که مزاج بر اساس نسبت مایعات نیست، بلکه بر اساس نسبت فرآیندهای عصبی تحریک و بازداری، درجه شدت و شدت آنها است. غلبه یک فرآیند بر فرآیند دیگر و همچنین سرعت تغییر یک فرآیند توسط فرآیندهای دیگر.

روش مشاهده به طور گسترده ای در فیزیولوژی (به ویژه در سایکوفیزیولوژی) استفاده می شود و در حال حاضر روش مشاهده با روش آزمایش مزمن ترکیب شده است.

روش آزمایش. یک آزمایش فیزیولوژیکی، برخلاف مشاهده ساده، یک مداخله هدفمند در مدیریت فعلی بدن است که برای روشن شدن ماهیت و ویژگی های عملکرد آن، روابط آنها با سایر عملکردها و با عوامل محیطی طراحی شده است. همچنین، مداخله اغلب مستلزم آماده‌سازی جراحی حیوان است که می‌تواند از موارد زیر استفاده کند: 1) اشکال حاد (Vivisection، از کلمه vivo - زنده، sekcia - secu، یعنی secu برای زنده)، 2) اشکال مزمن (تجربی-جراحی).

در این راستا، آزمایش به 2 نوع حاد (ویvisection) و مزمن تقسیم می شود. یک آزمایش فیزیولوژیکی به شما امکان می دهد به این سؤالات پاسخ دهید: آنچه در بدن اتفاق می افتد و چگونه اتفاق می افتد.

Vivisection نوعی آزمایش است که بر روی یک حیوان بی حرکت انجام می شود. برای اولین بار، Vivisection در قرون وسطی مورد استفاده قرار گرفت، اما به طور گسترده در علم فیزیولوژی در رنسانس (قرن XV-XVII) معرفی شد. بیهوشی در آن زمان مشخص نبود و حیوان با 4 دست و پا ثابت شده بود، در حالی که عذاب می کشید و فریادهای دلخراشی بر زبان می آورد. این آزمایش ها در اتاق های مخصوصی انجام شد که مردم به آن لقب «شیطانی» دادند. همین امر باعث پیدایش گروه ها و جریان های فلسفی شد. حیوان گرایی (روندها، ترویج نگرش انسانی نسبت به حیوانات و حمایت از پایان دادن به حیوان آزاری، حیوان گرایی در حال حاضر ترویج می شود)، حیات گرایی (حمایت از انجام نشدن آزمایش بر روی حیوانات و داوطلبان غیر بیهوش)، مکانیسم (به درستی شناسایی شده است). که در حیوانی با فرآیندهایی در طبیعت بی جان رخ می دهد، نماینده برجسته مکانیسم، فیزیکدان، مکانیک و فیزیولوژیست فرانسوی رنه دکارت، انسان محوری بود.

با شروع قرن نوزدهم، بیهوشی در آزمایشات حاد مورد استفاده قرار گرفت. این منجر به نقض فرآیندهای تنظیمی از طرف فرآیندهای بالاتر سیستم عصبی مرکزی شد، در نتیجه یکپارچگی پاسخ بدن و ارتباط آن با محیط خارجی نقض می شود. چنین استفاده ای از بیهوشی و آزار و اذیت جراحی در حین ویویسکشن پارامترهای کنترل نشده ای را وارد آزمایش حاد می کند که در نظر گرفتن و پیش بینی آنها دشوار است. یک آزمایش حاد، مانند هر روش آزمایشی، مزایای خود را دارد: 1) زنده گیری - یکی از روش های تحلیلی، شبیه سازی موقعیت های مختلف را ممکن می کند، 2) زنده گیری امکان به دست آوردن نتایج را در زمان نسبتاً کوتاهی ممکن می کند. و معایب: 1) در آزمایش حاد، هنگام استفاده از بیهوشی، هوشیاری خاموش می شود و بر این اساس، یکپارچگی پاسخ بدن نقض می شود، 2) ارتباط بدن با محیط در موارد بیهوشی مختل می شود، 3) در عدم وجود بیهوشی، ترشح ناکافی هورمون های استرس و مواد درون زا (تولید شده توسط داخل بدن) مورفین مانند اندورفین وجود دارد که اثر ضد درد دارند.

همه اینها به توسعه یک آزمایش مزمن کمک کرد - مشاهده طولانی مدت پس از مداخله حاد و بازیابی روابط با محیط. مزایای آزمایش مزمن: بدن تا حد امکان به شرایط وجود فشرده نزدیک است. برخی از فیزیولوژیست ها کاستی های یک آزمایش مزمن را به این واقعیت نسبت می دهند که نتایج در یک زمان نسبتا طولانی به دست می آید.

آزمایش مزمن اولین بار توسط فیزیولوژیست روسی I.P. پاولوف، و از اواخر قرن 18، به طور گسترده ای در تحقیقات فیزیولوژیکی استفاده شده است. تعدادی از تکنیک ها و رویکردهای روش شناختی در آزمایش مزمن استفاده می شود.

روش ابداع شده توسط پاولوف روشی برای تحمیل فیستول بر روی اندام های توخالی و اندام هایی است که مجاری دفعی دارند. جد روش فیستول باسوف بود، اما زمانی که فیستول به روش او اعمال شد، محتویات معده به همراه شیره های گوارشی داخل لوله آزمایش می افتاد که مطالعه ترکیب شیره معده، مراحل هضم، سرعت فرآیندهای هضم و کیفیت شیره معده جدا شده برای ترکیبات مختلف غذا.

فیستول ها را می توان بر روی معده، مجاری غدد بزاقی، روده ها، مری و غیره قرار داد. تفاوت فیستول پاولو و باسووی در این است که پاولوف فیستول را روی "بطن کوچک" اعمال کرد که به طور مصنوعی با جراحی ساخته شد و آن را حفظ کرد. تنظیم گوارش و هومورال این به پاولوف اجازه داد تا نه تنها ترکیب کیفی و کمی آب معده برای مصرف غذا، بلکه مکانیسم های تنظیم عصبی و هومورال هضم در معده را نیز آشکار کند. علاوه بر این، این به پاولوف اجازه داد تا 3 مرحله هضم را شناسایی کند:

1) رفلکس شرطی - با آن آب معده اشتها آور یا "اشتعال" آزاد می شود.

2) فاز رفلکس بی قید و شرط - شیره معده بدون توجه به ترکیب کیفی آن، روی غذای ورودی ترشح می شود، زیرا. در معده نه تنها گیرنده های شیمیایی، بلکه غیرشیمیایی نیز وجود دارند که به حجم غذا واکنش نشان می دهند.

3) فاز روده - پس از ورود غذا به روده، هضم غذا تقویت می شود.

پاولوف به دلیل فعالیت در زمینه گوارش، جایزه نوبل را دریافت کرد.

آناستنوزهای عصبی عروقی یا عصبی عضلانی ناهمگن. این تغییر در اندام مؤثر در تنظیم عصبی عملکردهای ژنتیکی تعیین شده است. انجام چنین آناستنوزهایی عدم وجود یا وجود انعطاف پذیری نورون ها یا مراکز عصبی را در تنظیم عملکردها نشان می دهد. آیا عصب سیاتیک با بقیه ستون فقرات می تواند ماهیچه های تنفسی را کنترل کند یا خیر.

در آناستنوزهای عصبی عروقی، اندام‌های مؤثر رگ‌های خونی و بر این اساس، گیرنده‌های شیمیایی و بارورسیتی هستند که در آنها قرار دارند. آناستنوز را می توان نه تنها بر روی یک حیوان، بلکه بر روی حیوانات مختلف نیز انجام داد. به عنوان مثال، اگر آناستنوز عصبی عروقی در دو سگ در ناحیه کاروتید (انشعاب قوس شریان کاروتید) انجام شود، می توان نقش بخش های مختلف سیستم عصبی مرکزی را در تنظیم تنفس، خون سازی، تشخیص داد. و تون عروقی در همان زمان، حالت هوای استنشاقی در سگ پایینی تغییر می کند و تنظیم در سگ دیگر دیده می شود.

پیوند اعضای مختلف بدن. کاشت مجدد و برداشتن اندام ها یا قسمت های مختلف مغز (خروج). در نتیجه برداشتن یک عضو، کم کاری غده خاصی ایجاد می شود؛ در نتیجه کاشت مجدد، وضعیت عملکرد بیش از حد یا بیش از حد هورمون های یک غده خاص ایجاد می شود.

بیرون زدگی قسمت های مختلف مغز و قشر مغز عملکرد این بخش ها را آشکار می کند. به عنوان مثال، هنگامی که مخچه برداشته شد، مشارکت آن در تنظیم حرکت، در حفظ وضعیت بدن و رفلکس های استاتوکینتیک آشکار شد.

برداشتن بخش‌های مختلف قشر مغز به برادمن اجازه داد تا از مغز نقشه‌برداری کند. او پوست را با توجه به موارد عملکردی به 52 مزرعه تقسیم کرد.

روش قطع نخاع. به شما امکان می دهد اهمیت عملکردی هر بخش از سیستم عصبی مرکزی را در تنظیم عملکردهای جسمی و احشایی بدن و همچنین در تنظیم رفتار شناسایی کنید.

کاشت الکترون در قسمت های مختلف مغز. به شما امکان می دهد فعالیت و اهمیت عملکردی یک ساختار عصبی خاص را در تنظیم عملکردهای بدن (عملکردهای حرکتی، عملکردهای احشایی و ذهنی) شناسایی کنید. الکترودهای کاشته شده در مغز از مواد بی اثر (یعنی باید مسموم کننده باشند) ساخته شده اند: پلاتین، نقره، پالادیوم. الکترودها نه تنها اجازه می دهند عملکرد یک منطقه یا ناحیه دیگر را آشکار کنند، بلکه بالعکس، ثبت کنند که ظاهر در کدام قسمت از مغز باعث ایجاد پتانسیل (BT) در پاسخ به عملکردهای عملکردی خاص می شود. فناوری میکروالکترود به فرد این فرصت را می دهد که پایه های فیزیولوژیکی روان و رفتار را مطالعه کند.

کاشت کانولا (میکرو). پرفیوژن عبارت است از عبور محلول هایی با ترکیبات شیمیایی مختلف توسط جزء ما یا با حضور متابولیت ها در آن (گلوکز، پی وی سی، اسید لاکتیک) یا با محتوای مواد فعال بیولوژیکی (هورمون ها، هورمون های عصبی، اندورفین ها، انکفامین ها و غیره). کانولا به شما امکان می دهد محلول هایی با محتویات مختلف را به ناحیه خاصی از مغز تزریق کنید و تغییراتی را در فعالیت عملکردی در قسمت دستگاه حرکتی، اندام های داخلی یا رفتار، فعالیت روانی مشاهده کنید.

فناوری میکروالکترود و کونژوگاسیون نه تنها در حیوانات، بلکه در انسان در طی جراحی مغز نیز استفاده می شود. در بیشتر موارد، این کار برای اهداف تشخیصی انجام می شود.

معرفی اتم‌های نشان‌دار و مشاهدات بعدی بر روی یک توموگرافی گسیل پوزیترون (PET). اغلب، آئورو گلوکز با برچسب طلا (طلا + گلوکز) تجویز می شود. طبق بیان مجازی گرین، ATP اهداکننده انرژی جهانی در تمام سیستم های زنده است و در سنتز و سنتز مجدد ATP، گلوکز بستر اصلی انرژی است (سنتز مجدد ATP می تواند از کراتین فسفات نیز رخ دهد). بنابراین، مقدار گلوکز مصرفی برای قضاوت در مورد فعالیت عملکردی بخش خاصی از مغز، فعالیت مصنوعی آن استفاده می شود.

گلوکز توسط سلول ها مصرف می شود، در حالی که طلا استفاده نمی شود و در این ناحیه تجمع می یابد. با توجه به طلای چند فعال، مقدار آن بر اساس فعالیت مصنوعی و عملکردی ارزیابی می شود.

روش های استریوتاکتیک اینها روشهایی هستند که در آنها عمل جراحی برای کاشت الکترودها در ناحیه خاصی از مغز مطابق با اطلس استریوتاکسی مغز انجام می شود و پس از آن ثبت پتانسیل های زیستی سریع و آهسته اختصاص داده شده با ثبت پتانسیل های برانگیخته و همچنین ثبت می شود. ضبط EEG، میوگرام.

هنگام تعیین اهداف و مقاصد جدید، می توان از یک حیوان برای مدت طولانی مشاهده استفاده کرد، محل ریز عناصر را تغییر داد یا نواحی مختلف مغز یا اندام ها را با محلول های مختلف که نه تنها حاوی مواد فعال بیولوژیکی، بلکه متاتولیت ها نیز هستند، پرفیوژن کرد. سوبستراهای انرژی (گلوکز، کرئوتین فسفات، ATP).

روش های بیوشیمیایی این گروه بزرگی از روش‌ها است که در سیالات، بافت‌ها و گاهی اندام‌ها در گردش، سطح کاتیون‌ها، آنیون‌ها، عناصر یونیزه (کلان و میکرو عناصر)، مواد انرژی‌زا، آنزیم‌ها، مواد فعال بیولوژیکی (هورمون‌ها و غیره) تعیین می‌شود. . این روش ها یا in vivo (در انکوباتورها) و یا در بافت هایی که به ترشح و سنتز مواد تولید شده در محیط جوجه کشی ادامه می دهند، اعمال می شوند.

روش های بیوشیمیایی امکان ارزیابی فعالیت عملکردی یک اندام خاص یا بخشی از آن و گاهی اوقات حتی کل سیستم اندام را فراهم می کند. به عنوان مثال، سطح 11-OCS می تواند برای قضاوت در مورد فعالیت عملکردی ناحیه فاسیکولار قشر آدرنال استفاده شود، اما سطح 11-OCS می تواند برای قضاوت در مورد فعالیت عملکردی سیستم هیپوتالاموس-هیپوفیز-آدرنال نیز مورد استفاده قرار گیرد. . به طور کلی، از آنجایی که 11-OCS محصول نهایی پیوند محیطی قشر آدرنال است.

روش های مطالعه فیزیولوژی GNI. کار ذهنی مغز برای مدت طولانی برای علوم طبیعی به طور کلی و فیزیولوژی به طور خاص غیر قابل دسترس باقی ماند. عمدتاً به این دلیل که بر اساس احساسات و تأثیرات قضاوت می شد، یعنی. با استفاده از روش های ذهنی موفقیت در این زمینه دانش زمانی تعیین شد که فعالیت ذهنی (GNA) با استفاده از روش عینی رفلکس های شرطی با پیچیدگی های مختلف توسعه مورد قضاوت قرار گرفت. در آغاز قرن بیستم، پاولوف روشی را برای ایجاد رفلکس های شرطی ابداع و پیشنهاد کرد. بر اساس این تکنیک، روش های اضافی برای مطالعه خواص GNI و محلی سازی فرآیندهای GNI در مغز امکان پذیر است. از بین تمام تکنیک ها، موارد زیر بیشترین استفاده را دارند:

نمونه هایی از امکان شکل گیری اشکال مختلف رفلکس های شرطی (به تن کردن، به رنگ کردن و غیره) که قضاوت در مورد شرایط ادراک اولیه را ممکن می کند. مقایسه این مرزها در حیوانات گونه‌های مختلف این امکان را فراهم می‌کند که مسیر تکامل سیستم‌های حسی GNA را آشکار کند.

مطالعه انتوژنتیکی رفلکس های شرطی. رفتار پیچیده حیوانات در سنین مختلف، هنگامی که مطالعه می شود، این امکان را فراهم می کند که مشخص شود در این رفتار چه چیزی ذاتی و چه چیزی اکتسابی است. به عنوان مثال، پاولوف توله هایی از همان بستر را گرفت و به برخی از آنها گوشت و برخی دیگر با شیر تغذیه کرد. پس از رسیدن به بزرگسالی، او رفلکس های شرطی را در آنها ایجاد کرد و معلوم شد که در سگ هایی که از کودکی شیر دریافت می کردند، رفلکس های شرطی برای شیر ایجاد می شد و در سگ هایی که از کودکی با گوشت تغذیه می شدند، رفلکس های شرطی به راحتی برای گوشت ایجاد می شد. . بنابراین، سگ ها ترجیح شدیدی برای نوع غذای گوشتخوار ندارند، نکته اصلی این است که کامل باشد.

مطالعه فیلوژنتیکی رفلکس های شرطی. با مقایسه ویژگی های فعالیت رفلکس شرطی حیوانات در سطوح مختلف رشد، می توان قضاوت کرد که تکامل GNI به چه سمتی می رود. به عنوان مثال، معلوم شد که سرعت تشکیل رفلکس های شرطی به شدت از بی مهرگان و مهره داران، در طول تاریخ رشد مهره داران نسبتاً ریز تغییر می کند، و به طور ناگهانی به توانایی فرد می رسد که بلافاصله رویدادهای همزمان را به هم متصل کند (نقوش)، چاپ کردن نیز وجود دارد. ویژگی پرندگان مولد (جوجه اردک های بیرون آمده از تخم ها می توانند هر شیئی را دنبال کنند: مرغ، شخص و حتی یک اسباب بازی متحرک. انتقال بین بی مهرگان و مهره داران، مهره داران و انسان منعکس کننده مراحل بحرانی تکامل مرتبط با ظهور و توسعه است. GNA (حشرات دارای یک سیستم عصبی غیر سلولی هستند، coelenterates یک نوع شبکه ای دارند، در مهره داران - یک نوع لوله ای، در پرندگان گانگلیون توپ ظاهر می شود، برخی باعث توسعه بالای فعالیت رفلکس شرطی می شوند. در انسان، قشر مغز به خوبی توسعه یافته است. که باعث پرش می شود.

مطالعه بوم شناختی رفلکس های شرطی. پتانسیل عمل ناشی از سلول های عصبی درگیر در تشکیل اتصالات رفلکس، شناسایی پیوندهای اصلی رفلکس شرطی را ممکن می سازد.

به ویژه مهم است که شاخص های بیوالکترونیکی امکان مشاهده شکل گیری یک رفلکس شرطی در ساختارهای مغز را حتی قبل از اینکه در رفلکس های حرکتی یا رویشی (احشایی) بدن ظاهر شود، ممکن می سازد. تحریک مستقیم ساختارهای عصبی مغز این امکان را فراهم می کند که آزمایش های مدلی را در مورد تشکیل اتصالات عصبی بین کانون های مصنوعی تحریک تنظیم کنید. همچنین می توان به طور مستقیم تعیین کرد که چگونه تحریک پذیری ساختارهای عصبی شرکت کننده در آن در طی یک رفلکس شرطی تغییر می کند.

اثر فارماکولوژیک در شکل گیری یا تغییر رفلکس های شرطی. با وارد کردن مواد خاص به مغز می توان تعیین کرد که آنها چه تأثیری بر سرعت و قدرت تشکیل رفلکس های شرطی دارند، بر توانایی بازسازی رفلکس شرطی که امکان قضاوت در مورد تحرک عملکردی مرکز را ممکن می کند. سیستم عصبی، و همچنین وضعیت عملکردی نورون های قشر مغز و عملکرد آنها. به عنوان مثال، مشخص شد که کافئین هنگامی که سلول های عصبی بسیار کارآمد هستند، تشکیل رفلکس های شرطی را فراهم می کند، و زمانی که عملکرد آنها کم است، حتی یک دوز کوچک کافئین تحریک را برای سلول های عصبی غیرقابل تحمل می کند.

ایجاد آسیب شناسی تجربی فعالیت رفلکس شرطی. به عنوان مثال، برداشتن لوب های تمپورال قشر مغز با جراحی منجر به ناشنوایی ذهنی می شود. روش اکسترپاسیون اهمیت عملکردی مناطق قشر، زیر قشر و ساقه مغز را نشان می دهد. به همین ترتیب، محلی سازی انتهای قشر آنالایزرها تعیین می شود.

مدل سازی فرآیندهای فعالیت رفلکس شرطی. پاولوف همچنین ریاضیدانان را جذب کرد تا با فرمولی وابستگی کمی تشکیل یک رفلکس شرطی را به فرکانس تقویت آن بیان کنند. مشخص شد که در اکثر حیوانات سالم، از جمله انسان، پس از 5 بار تقویت با یک محرک بدون شرط، یک رفلکس شرطی در افراد سالم ایجاد شد. این امر به ویژه در پرورش سگ های خدماتی و در سیرک اهمیت دارد.

مقایسه تظاهرات روانی و فیزیولوژیکی رفلکس شرطی. حمایت از توجه داوطلبانه، پرواز، کارایی یادگیری.

مقایسه تظاهرات روانی و فیزیولوژیکی با عناصر زیستی و مورفولوژیکی با بیوکینتیک: تولید پروتئین های حافظه (S-100) یا مکان های مواد فعال بیولوژیکی در تشکیل رفلکس های شرطی. ثابت شده است که اگر فرآیند عروقی معرفی شود، رفلکس های شرطی سریعتر ایجاد می شوند (فشار عروقی یک هورمون عصبی است که در هیپوتالاموس تولید می شود). تغییرات مورفولوژیکی در ساختار یک نورون: یک نورون برهنه در بدو تولد و با دنوریت در یک بزرگسال.

آزمایشگاه شماره 1

موضوع: روشهای قلع و قمع و کاشت مجدد

هدف: آشنایی با روش های ریزش و کاشت مجدد غدد پاراتیروئید. مدل سازی کم کاری و هیپرپاراتیروئیدیسم

تجهیزات: حیوانات آزمایشگاهی (5 موش)، دستگاه انعقاد الکتریکی، موچین، قیچی، چاقوی جراحی، ید، سوزن دوخت پوست، مواد بخیه، میز عمل، اتر بیهوشی، قیف.

پیش رفتن

کار 1. مدلسازی کمبود هورمون پاراتیروئید در موش صحرایی.

کمبود هورمون های پاراتیروئید با برداشتن هر دو غده پاراتیروئید با استفاده از دستگاه الکتروسرجری با فرکانس بالا EH-30 ایجاد می شود. اصل کار دستگاه به شرح زیر است: به دلیل جریان فرکانس بالا، بافت ها به سرعت گرم می شوند و محتویات سلول ها تبخیر می شوند. این دستگاه در 2 حالت "برش" و "انعقاد" کار می کند. حذف غدد در حالت انعقاد با یک الکترود نازک اتفاق می افتد، d تقریباً برابر با اندازه PTG است. برای انعقاد غدد، تماس 1-1.5 ثانیه کافی است. در حالت برش، غدد را می توان از بین برد. از مزایای انعقاد در مقایسه با PTG extilation این است که از دست دادن خون حذف می شود و بافت تیروئید آسیب نمی بیند. دوره بعد از عمل 2 هفته.

کار 2. مدل سازی هورمون های پاراتیروئید اضافی در موش صحرایی.

برای شبیه سازی هیپرپاراتیروئیدیسم از روش پیوند PTG استفاده شد. ماهیت روش در پیوند موش های دریافت کننده زیر پوست گردن 3 جفت PTG از 3 موش اهدا کننده نهفته است. موش های اهداکننده باید تقریباً هم وزن موش های دریافت کننده باشند.

اهداکنندگان تحت بیهوشی اتر یک برش پوستی در ناحیه تراکم قدامی گردن به طول 2-3 سانتی متر ایجاد می کنند، بنابراین ماهیچه ها به صورت صاف از هم جدا می شوند و PTG را در دسترس قرار می دهند. در این حالت، موش اهدایی در زیر قیف قرار می گیرد و به بیهوشی اتر ادامه می دهد. قبل از عمل، حیوان دریافت‌کننده به پشت روی میز جراحی ثابت شد و همچنین در موش‌های اهداکننده، یک برش پوستی به طول 2 تا 3 سانتی‌متر در ناحیه تراکم قدامی گردن ایجاد شد. سپس؟ 6 برش کم عمق با چاقوی جراحی در بافت زیر جلدی ایجاد شد که به عنوان نوعی سلول برای PTG پیوندی عمل می کرد. سپس، PTGها به سرعت از 3 موش اهداکننده جدا شدند و در برش های آماده شده در موش گیرنده قرار داده شدند. برش پوست گیرنده با ابریشم جراحی بخیه شد و با ید درمان شد. در روزهای بعد، زخم جراحی اصلاح شد. بهبودی کامل زخم پس از 7-8 روز مشاهده شد. PTG های پیوندی به خوبی ریشه می گیرند. این مدل پارت. هورمون ها به شما این امکان را می دهند که به دلیل بخار طبیعی، سطح خون آن را به صورت شبانه روزی افزایش دهید. هورمون

تکلیف برای کار مستقل.

وضعیت حیوانات عمل شده را تا زمان بهبودی کامل زخم و بردن مجدد آنها به آزمایش مشاهده کنید.

پس از 2 هفته، سطح کلسیم کل در حیوانات عمل شده را تعیین کنید که به طور غیر مستقیم نشان دهنده فعالیت عملکردی PTG و سلول های c غده تیروئید است و همچنین سطح 11-OKS که هر دو در پاسخ به استرس تغییر می کند. قرار گرفتن در معرض جراحی و در پاسخ به اختلال عملکرد PTG (به طور دقیق تر به اختلال هموستاز کلسیم).

آزمایشگاه شماره 2

کار 1. اوفورکتومی دوطرفه.

برای مطالعه الکتروژن‌ها در فعالیت تطبیقی ​​بدن، موش‌های ماده تحت اوفورکتومی دوطرفه قرار گرفتند. این عملیات مطابق با توصیه های مندرج در کتابچه راهنمای Bunok، 1968 انجام می شود.

حیوانات با اتر بیهوش شدند و روی میز عمل در وضعیت خوابیده قرار گرفتند. پشم روی شکم از جناغ تا ناحیه شرمگاهی بریده شد و پوست با الکل درمان شد. با چاقوی جراحی، برای اینکه به روده ها آسیبی نرسد، برش طولی به طول 4-5 سانتی متر در امتداد خط مضر شکم ایجاد شد. با یافتن شاخ راست یا چپ رحم، کاوش بیشتر در امتداد آن در امتداد مجرای تخمدان، تخمدان را پیدا می کنیم. رباط قسمت بالایی مجرای تخمدان و رباط حامی تخمدان را سوراخ می کنیم و بعد از آن پیشانی را با قیچی برش می دهیم. تخمدان دوم نیز به همین روش برداشته شد. پس از آن، ماهیچه ها و انتهای آن بخیه شد و بخیه با تنتور ید 5 درصد درمان شد.

پس از عمل، حیوانات در یک قفس تمیز قرار داده شدند، در طی 4-5 روز اول زخم هر روز با مواد ضد عفونی کننده درمان می شد. بهبود زخم در 8-10 روز اتفاق افتاد.

کار 1. آدرنالکتومی یکطرفه.

برای شبیه سازی کمبود گلوکوکورتیکوئید درون زا در حیوانات تحت AE (آدرنالکتومی).

عمل جراحی برداشتن یک غده فوق کلیوی طبق روش ارائه شده در دفترچه راهنمای کاباک یا.م انجام شد. این عمل تحت بیهوشی اتر انجام شد. موش بر روی میز عمل در وضعیت مستعد ثابت شد. در سمت چپ ستون فقرات، مو بریده شد و ناحیه جراحی با ید درمان شد. برش پوست و عضلات در فاصله 1 سانتی متری سمت چپ ستون فقرات ایجاد شد و 1.5 سانتی متر از قوس دنده ای به سمت پایین عقب نشینی کرد. در مرحله بعد، یک برش کوچک عضلانی با قلاب گسترش داده شد. غده آدرنال همراه با بافت چربی اطراف و طناب بافت همبند با فورسپس آناتومیک گرفته و خارج شد. زخم جراحی به صورت لایه ای بخیه شد.

در دوره بعد از عمل، هر زخم روزانه با مواد ضد عفونی کننده درمان می شد. بهبودی پس از 5-7 روز رخ داد.

نتیجه‌گیری: تخمدان و آدرنالکتومی به طور همزمان منجر به کاهش شدید قابلیت‌های انطباقی حیوانات به دلیل عدم تعادل هورمونی (کاهش عملکرد غدد فوق کلیوی منجر به هیپوکارتیسیسم و ​​هیپواستروژنی) و مرگ در روز نهم پس از عمل شد.

آزمایشگاه شماره 3

موضوع: روشهای تجویز دارو به حیوانات آزمایشگاهی. روش های آزمایش

هدف: آشنایی با روش ها و روش های تجویز داروها و انواع بارهای خوراکی و تزریقی به حیوانات آزمایشگاهی.

تجهیزات: سرنگ برای تجویز خوراکی، داخل عضلانی و داخل رحمی، مواد دارویی یا بار آبی، 2 قیف با درپوش، 2 لوله جمع آوری ادرار (آرامش)، 2 پوشک، محلول پتویترین (حاوی هورمون ضد ادرار - وادوپرسین)، نمک، آب مقطر.

پیش رفتن

کار 1. تأثیر آب و بار هیپرسوماتیک بر دیورز. اثر هورمون آنتی دیورتیک بر دیورز.

موش ها را وزن کرده و وزن بدن را یادداشت کنید. سپس با تزریق خوراکی به موش ها آب بدهید. برای انجام این کار، موش را در یک سه پایه "نرم" آویزان کنید، آن را قنداق کنید، آب گرم (37 درجه سانتیگراد) را به سرنگ متصل به پروب به میزان 5٪ وزن بدن بکشید. موش را به صورت عمودی نگه دارید، پروب را وارد دهان کنید و با احتیاط آن را به داخل معده حرکت دهید تا متوقف شود، پس از آن آب به تدریج از سرنگ خارج می شود. سپس به یک موش پتویترین به میزان 20 میلی لیتر در 100 گرم وزن بدن تزریق می شود. پس از آن، هر دو موش در قیف قرار داده شده و ادرار به مدت 1 ساعت جمع آوری می شود. پتویترین به صورت عضلانی تجویز می شود. برای این منظور پوست سر را با کورتسنگ می گیرند و همزمان با یک دست هم کورتسان و هم دم موش را می گیرند و سعی می کنند موش با هر 4 پنجه و ابعاد آن سطح میز را لمس کند. با ابعاد فیزیولوژیکی مطابقت دارد. با دست دوم، تزریق به ران (عضلات) انجام می شود، در حالی که پای عقبی با دم نگه داشته می شود.

نتیجه گیری: بدون پتویترین: 1.2 میلی لیتر، با پتویترین 0.7 میلی لیتر، یعنی. پتویترین باعث احتباس آب در بدن می شود.

روش تجویز تزریقی. هنگامی که مواد تجویز شده باید در اسرع وقت وارد گردش خون عمومی شوند و در مواردی که حجم داروهای تجویز شده از دوزهای مجاز برای تجویز عضلانی بیشتر شود استفاده می شود. با روش تزریق تزریقی، حجم می تواند به 5 سانتی متر مکعب برسد. به صورت تزریقی، بهتر است محلول های روغنی مواد دارویی تجویز شود.

با تجویز تزریقی، حیوان به صورت وارونه نگه داشته می شود، حیوان نباید به شدت در حالت خمیده حرکت کند. برای این منظور حیوان را با کورزانگ پشت سر و با دست ها پشت دم ثابت می کنند. با کمک موچین آناتومیک یا یک گیره کوچر کوچک، دیواره شکم کشیده می شود، در حالی که اندام های شکمی پایین می روند، سپس دیواره شکم را سوراخ می کنم، 2 سوراخ را ثابت می کنم: 1 سوراخ از طریق پوست، 2 سوراخ از طریق دیواره عضلانی صفاق. پس از آن، دارو به داخل حفره شکم تزریق می شود. گواه تجويز صحيح دارو در حفره شكمي، عدم وجود عوارض در حفره شكمي و فعال بودن حيوان پس از تزريق به شرط تجويز مواد غير مخدر است. با یک سوراخ، تزریق زیر جلدی خواهد بود.

آزمایشگاه شماره 4

موضوع: روش های آزمایش بیولوژیکی.

هدف: آشنایی با روش های آزمایش بیولوژیکی فعالیت عملکردی سیستم هیپوتالاموس-هیپوفیز-آدرنال.

تجهیزات: غده هیپوفیز موش گیرنده، هیپوتالاموس موش گیرنده، موش اهداکننده، معرف های مورد نیاز برای تهیه عصاره هیپوفیز و هیپوتالاموس، پنس، گیره کوچر، سرنگ داخل وریدی، قیچی، هپارین، لوله های خون گیری، سه پایه، ترازو پیچشی، حمام آب، اتر برای بیهوشی

پیش رفتن

کار 1. تعیین محتوای کورتیکوتروپین در غده هیپوفیز.

چشم انداز این روش تعیین افزایش حجم 11-OCS در پلاسمای خون موش های دریافت کننده است. پس از انجام آزمایش عصاره هیپوفیز به آنها. برای تعیین محتوای کورتیکوترپین، یک منحنی نوسانی از ابتدا ساخته شده است.

روش تعیین: غده هیپوفیز روی ترازوی پیچشی وزن شده و به مدت 10 روز در جعبه ای با استون بی آب قرار داده شد. سپس هیپوفیز وزن شده و به طور کامل در 100 میلی لیتر اسید استیک گلاسیال تراش داده شد. چوب با همان مقدار اسید استیک آبکشی شد. پس از آن، فنجان در یک حمام آب قرار گرفت و در دمای 70 درجه سانتیگراد به مدت 30 دقیقه تبخیر شد. عصاره به دست آمده در 2 میلی لیتر بی تقطیر رقیق شد و با 1 مولار NaHCO 3 خنثی شد، سپس با محلول کربس رینگر حاوی بی کربنات و گلوکز به وزن مورد نظر رقیق شد. هنگام رقیق کردن عصاره هیپوفیز، در نظر گرفته شد که 100 میکروگرم پودر استون دار باید به یک موش گیرنده داده شود.

آزمایش بیولوژیکی برای تعیین محتوای کورتیکوتروپین در غده هیپوفیز ترجیحاً بر روی موش های صحرایی نر انجام می شود. در روز قبل از آزمایش، به موش‌ها به صورت زیر جلدی پردنیزون به میزان 6 میلی‌گرم به ازای هر 100 گرم وزن بدن تزریق شد. دوز مشخص شده کورتیکواستروئید توسط اصل بازخورد، سیستم هیپوفیز-آدرنال موش های دریافت کننده را مسدود می کند و ترشح درون زا کورتیکوتروپین را متوقف می کند. یک روز بعد، سطح 11-OCS در پلاسمای خون در موش ها تعیین می شود. مقدار مورد نیاز عصاره هیپوفیز به صورت داخل وریدی تجویز شد و سطح 11-OCS 1 ساعت پس از تجویز عصاره هیپوفیز مورد آزمایش به موش‌های دریافت‌کننده مجدداً تعیین شد. با استفاده از منحنی "لگاریتم اثر دول"، محتوای کورتیکوتروپین در غده هیپوفیز موش آزمایشگاهی در بافت عسل در 100 میلی‌گرم بر متر تعیین شد.

آزمایشگاه شماره 5

موضوع: روش های بیوشیمیایی در فیزیولوژی.

درس 1. تعیین 11-OCS در پلاسمای خون.

هدف: تعیین تغییر در حجم 11-OCS در پلاسمای خون پس از قرار گرفتن در معرض مداخله جراحی در یک آزمایش فیزیولوژیکی.

روش شناسی: 1. 1-1.5 میلی لیتر خون از حیوان (از ورید دم یا ورید فمورال) بگیرید.

2. خون را به مدت 10 دقیقه با دور 2000 سانتریفیوژ کنید.

3. پلاسما را از عناصر تشکیل شده جدا کرده و با درپوش زمینی به لوله آزمایش انتقال دهید. پلاسما باید 1 میلی لیتر باشد یا با دو تقطیر به این مقدار برسد.

4. 6 میلی لیتر هگزان را به لوله آزمایش اضافه کنید، به مدت 20 ثانیه تکان دهید. این باعث حذف کلسترول از پلاسما می شود. هگزان مصرف شده را با پمپ آب جت حذف کنید.

5. کلروفرم 10 میلی لیتر را اضافه کنید، به مدت 1 دقیقه تکان دهید. در این حالت کورتیکواستروئیدها در کلروفرم حل می شوند. بخش پلاسما باقی مانده را با یک پمپ بردارید.

6. عصاره را با محلول NaOH 0.1 مولار بشویید و 1 میلی لیتر به آن اضافه کنید. به مدت 1 دقیقه تکان دهید و با پمپ آب جت بردارید.

8. پس از آن، 8 میلی لیتر از عصاره را بردارید و آن را به یک لوله آزمایش تمیز و خشک با درب آسیاب شده منتقل کنید.

9. 6 میلی لیتر مخلوط الکل مطلق (اتیل) با H 2 SO 4 را به عصاره اضافه کنید که در آزمایش ساوامو مقاومت می کند. نسبت الکل و اسید 1:3 است (3 الکل و 1 اسید). 1 دقیقه تکان دهید و یک ساعت در جای سرد در جای گرم بگذارید. در همان زمان، کورتیکواستروئیدها در مخلوطی از اسید و الکل حل می شوند. پس از آن حجم 11-OKS با استفاده از اسپکتروفتومتر Kvant تعیین می شود.

تجهیزات: مجموعه دوتایی لوله های درپوش دار، قفسه ها، لوله های سانتریفیوژ، پمپ جت آب، پیپت های 3×1 میلی لیتری، پیپت های 2×10 میلی لیتری، پیپت های 1×6 میلی لیتری.

معرفها: دو تقطیر، هگزان، محلول NaOH 0.1، کروروفرم، اتانول 100%، H2SO4 طبق Savamo (100%).

روش‌های بررسی وضعیت عاطفی در موش‌های صحرایی

این به شما امکان می دهد فرهنگ علمی نویسنده، عمق نفوذ او به موضوع و اخلاق موقعیت او را در رابطه با نویسندگان منابع مورد استفاده قضاوت کنید. دستگاه کتابشناختی تحقیقات علمی مطابق با الزامات GOST 7.1.84 "شرح کتابشناختی سند" و با در نظر گرفتن قوانین کوتاه "تدوین شرح کتابشناختی" تهیه شده است. مرجع و کتابشناختی ...

بررسی اعتبار و قابلیت اطمینان در صورت امکان، این داده‌ها باید با استفاده از روش‌های عینی‌تر دیگر، به‌ویژه محاسبات ریاضی، کنترل شوند. 2. طبقه بندی روشهای اصلی تحقیق روانشناختی در حال حاضر رویکردهایی برای ساختن سیستمی از روشهای روانشناسی تعریف شده است. در کلی ترین شکل، معمولا به دو دسته تقسیم می شوند.

که با روش هنجاری با کمک استانداردهای مصرف علمی توسعه یافته ایجاد می شوند. با رویکرد نسبی، حداقل بودجه مصرف (MCB) با روش آماری بر اساس مصرف واقعی در خانوارهای کم درآمد تعیین می شود. با رویکرد ذهنی، سطح درآمد پایین با نظرسنجی از افکار عمومی مشخص می شود. اندازه گیری PM یا ...

بیماری ها تعیین نشانگرهای تومور، اگرچه گران است، اما یک روش تحقیقاتی بسیار مهم است که بدون آن در برخی موارد به سادگی غیرممکن است. اکثر روش های تحقیق آزمایشگاهی به تجهیزات خاصی نیاز دارند. بنابراین، برای تهیه و نگهداری نمونه ها در دمای معین، و همچنین برای مطالعات باکتریولوژیکی و سرولوژیکی، از ترموستات ها و همچنین ...

ارسال کار خوب خود در پایگاه دانش ساده است. از فرم زیر استفاده کنید

دانشجویان، دانشجویان تحصیلات تکمیلی، دانشمندان جوانی که از دانش پایه در تحصیل و کار خود استفاده می کنند از شما بسیار سپاسگزار خواهند بود.

روشهای تحقیق فیزیولوژیک

فیزیولوژی علمی است که مکانیسم های عملکرد یک موجود زنده را در رابطه آن با محیط مطالعه می کند (این علم زندگی یک موجود زنده است)، فیزیولوژی یک علم تجربی است و روش های اصلی علم فیزیولوژی روش های تجربی هستند. با این حال، فیزیولوژی به عنوان یک علم حتی قبل از دوران ما در یونان باستان در مدرسه بقراط، زمانی که روش اصلی تحقیق روش مشاهده بود، در علم پزشکی سرچشمه گرفت. فیزیولوژی در قرن پانزدهم به لطف تحقیقات هاروی و تعدادی دیگر از دانشمندان علوم طبیعی به عنوان یک علم مستقل ظهور کرد و از اواخر قرن پانزدهم تا اوایل قرن شانزدهم روش اصلی در زمینه فیزیولوژی روش آزمایش که در. سچنوف و I.P. پاولوف سهم قابل توجهی در توسعه روش شناسی در زمینه فیزیولوژی، به ویژه در توسعه یک آزمایش مزمن داشت.

ادبیات:

1. فیزیولوژی انسان. کوسیتسکی

2. کوربکوف. فیزیولوژی طبیعی

3. زیمکین. فیزیولوژی انسان.

4. فیزیولوژی انسان، ویرایش. پوکروفسکی V.N.، 1998

5. فیزیولوژی GNI. کوگان.

6. فیزیولوژی انسان و حیوانات. کوگان. 2 تن

7. اد. Tkachenko P.I. فیزیولوژی انسان. 3 تن

8. اد. نوزدروچف. فیزیولوژی. دوره عمومی. 2 تن

9. اد. کورایف. 3 v. کتاب درسی ترجمه شده؟ فیزیولوژی انسان.

روش مشاهده- باستانی ترین، منشأ آن در Dr. یونان، در مصر به خوبی توسعه یافته بود، بر اساس دکتر. شرق، تبت، چین. ماهیت این روش در مشاهده طولانی مدت تغییرات اعمال و حالات بدن، رفع این مشاهدات و در صورت امکان مقایسه مشاهدات بصری با تغییرات بدن پس از باز شدن است. در مصر، هنگام مومیایی کردن، اجساد را باز می کردند، مشاهدات کشیش از بیمار: تغییر در پوست، عمق و تعداد دفعات تنفس، ماهیت و شدت ترشحات از بینی، دهان و همچنین حجم و رنگ ادرار. شفافیت آن، مقدار و ماهیت مدفوع دفع شده، رنگ آن، ضربان نبض و سایر شاخص‌ها که با تغییرات اندام‌های داخلی مقایسه شد، روی پاپیروس ثبت شد. بنابراین، در حال حاضر با تغییر مدفوع، ادرار، خلط و غیره دفع شده توسط بدن. می توان در مورد نقض عملکرد یک یا آن عضو قضاوت کرد، به عنوان مثال، اگر مدفوع سفید باشد، فرض بر این است که نقض عملکرد کبد مجاز است، اگر مدفوع سیاه یا تیره باشد، پس از آن است. احتمال خونریزی معده یا روده وجود دارد. تغییر در رنگ و تورگ پوست، تورم پوست، شخصیت آن، رنگ صلبیه، تعریق، لرزش و غیره به عنوان یک معیار اضافی عمل می کرد.

بقراط ماهیت رفتار را به نشانه های مشاهده شده نسبت داد. به لطف مشاهدات دقیق خود، او دکترین خلق و خو را تدوین کرد که بر اساس آن کل بشریت با توجه به ویژگی های رفتاری به 4 نوع تقسیم می شود: وبا، روان، بلغم، سودا، اما بقراط در توجیه فیزیولوژیکی انواع اشتباه می کرد. . او هر نوع را بر اساس نسبت مایعات اصلی بدن: سانگوئین - خون، خلط - مایع بافتی، وبا - صفرا، ملانکولیا - صفرا سیاه استوار کرد. اثبات نظری علمی مزاج ها توسط پاولوف در نتیجه مطالعات تجربی طولانی ارائه شد و مشخص شد که مزاج بر اساس نسبت مایعات نیست، بلکه بر اساس نسبت فرآیندهای عصبی تحریک و بازداری، درجه شدت و شدت آنها است. غلبه یک فرآیند بر فرآیند دیگر و همچنین سرعت تغییر یک فرآیند توسط فرآیندهای دیگر.

روش مشاهده به طور گسترده ای در فیزیولوژی (به ویژه در سایکوفیزیولوژی) استفاده می شود و در حال حاضر روش مشاهده با روش آزمایش مزمن ترکیب شده است.

روش آزمایش. یک آزمایش فیزیولوژیکی، برخلاف مشاهده ساده، مداخله ای هدفمند در مدیریت فعلی ارگانیسم است که برای روشن شدن ماهیت و ویژگی های عملکردهای آن، روابط آنها با سایر عملکردها و با عوامل محیطی طراحی شده است. همچنین، مداخله اغلب مستلزم آماده‌سازی جراحی حیوان است که می‌تواند از موارد زیر استفاده کند: 1) اشکال حاد (Vivisection، از کلمه vivo - زنده، sekcia - secu، یعنی secu برای زنده)، 2) اشکال مزمن (تجربی-جراحی).

در این راستا، آزمایش به 2 نوع حاد (ویvisection) و مزمن تقسیم می شود. یک آزمایش فیزیولوژیکی به شما امکان می دهد به این سؤالات پاسخ دهید: آنچه در بدن اتفاق می افتد و چگونه اتفاق می افتد.

Vivisection نوعی آزمایش است که بر روی یک حیوان بی حرکت انجام می شود. برای اولین بار، Vivisection در قرون وسطی مورد استفاده قرار گرفت، اما به طور گسترده در علم فیزیولوژی در رنسانس (قرن XV-XVII) معرفی شد. بیهوشی در آن زمان مشخص نبود و حیوان با 4 دست و پا ثابت شده بود، در حالی که عذاب می کشید و فریادهای دلخراشی بر زبان می آورد. این آزمایش ها در اتاق های مخصوصی انجام شد که مردم به آن لقب «شیطانی» دادند. همین امر باعث پیدایش گروه ها و جریان های فلسفی شد. حیوان گرایی (روندها، ترویج نگرش انسانی نسبت به حیوانات و حمایت از پایان دادن به حیوان آزاری، حیوان گرایی در حال حاضر ترویج می شود)، حیات گرایی (حمایت از انجام نشدن آزمایش بر روی حیوانات و داوطلبان غیر بیهوش)، مکانیسم (به درستی شناسایی شده است). که در حیوانی با فرآیندهایی در طبیعت بی جان رخ می دهد، نماینده برجسته مکانیسم، فیزیکدان، مکانیک و فیزیولوژیست فرانسوی رنه دکارت، انسان محوری بود.

با شروع قرن نوزدهم، بیهوشی در آزمایشات حاد مورد استفاده قرار گرفت. این منجر به نقض فرآیندهای تنظیمی از طرف فرآیندهای بالاتر سیستم عصبی مرکزی شد، در نتیجه یکپارچگی پاسخ بدن و ارتباط آن با محیط خارجی نقض می شود. چنین استفاده ای از بیهوشی و آزار و اذیت جراحی در حین ویویسکشن پارامترهای کنترل نشده ای را وارد آزمایش حاد می کند که در نظر گرفتن و پیش بینی آنها دشوار است. یک آزمایش حاد، مانند هر روش آزمایشی، مزایای خود را دارد: 1) زنده گیری - یکی از روش های تحلیلی، شبیه سازی موقعیت های مختلف را ممکن می کند، 2) زنده گیری امکان به دست آوردن نتایج را در زمان نسبتاً کوتاهی ممکن می کند. و معایب: 1) در آزمایش حاد، هنگام استفاده از بیهوشی، هوشیاری خاموش می شود و بر این اساس، یکپارچگی پاسخ بدن نقض می شود، 2) ارتباط بدن با محیط در موارد بیهوشی مختل می شود، 3) در عدم وجود بیهوشی، ترشح ناکافی هورمون های استرس و مواد درون زا (تولید شده توسط داخل بدن) مورفین مانند اندورفین وجود دارد که اثر ضد درد دارند.

همه اینها به توسعه یک آزمایش مزمن کمک کرد - مشاهده طولانی مدت پس از مداخله حاد و بازیابی روابط با محیط. مزایای آزمایش مزمن: بدن تا حد امکان به شرایط وجود فشرده نزدیک است. برخی از فیزیولوژیست ها کاستی های یک آزمایش مزمن را به این واقعیت نسبت می دهند که نتایج در یک زمان نسبتا طولانی به دست می آید.

آزمایش مزمن اولین بار توسط فیزیولوژیست روسی I.P. پاولوف، و از اواخر قرن 18، به طور گسترده ای در تحقیقات فیزیولوژیکی استفاده شده است. تعدادی از تکنیک ها و رویکردهای روش شناختی در آزمایش مزمن استفاده می شود.

روش ابداع شده توسط پاولوف روشی برای تحمیل فیستول بر روی اندام های توخالی و اندام هایی است که مجاری دفعی دارند. جد روش فیستول باسوف بود، اما زمانی که فیستول به روش او اعمال شد، محتویات معده به همراه شیره های گوارشی داخل لوله آزمایش می افتاد که مطالعه ترکیب شیره معده، مراحل هضم، سرعت فرآیندهای هضم و کیفیت شیره معده جدا شده برای ترکیبات مختلف غذا.

فیستول ها را می توان بر روی معده، مجاری غدد بزاقی، روده ها، مری و غیره قرار داد. تفاوت فیستول پاولو و باسووی در این است که پاولوف فیستول را روی "بطن کوچک" اعمال کرد که به طور مصنوعی با جراحی ساخته شد و آن را حفظ کرد. تنظیم گوارش و هومورال این به پاولوف اجازه داد تا نه تنها ترکیب کیفی و کمی آب معده برای مصرف غذا، بلکه مکانیسم های تنظیم عصبی و هومورال هضم در معده را نیز آشکار کند. علاوه بر این، این به پاولوف اجازه داد تا 3 مرحله هضم را شناسایی کند:

1) رفلکس شرطی - با آن آب معده اشتها آور یا "اشتعال" آزاد می شود.

2) فاز رفلکس بی قید و شرط - شیره معده بدون توجه به ترکیب کیفی آن، روی غذای ورودی ترشح می شود، زیرا. در معده نه تنها گیرنده های شیمیایی، بلکه غیرشیمیایی نیز وجود دارند که به حجم غذا واکنش نشان می دهند.

3) فاز روده - پس از ورود غذا به روده، هضم غذا تقویت می شود.

پاولوف به دلیل فعالیت در زمینه گوارش، جایزه نوبل را دریافت کرد.

آناستازهای عصبی عروقی یا عصبی عضلانی ناهمگنهبینی ها. این تغییر در اندام مؤثر در تنظیم عصبی عملکردهای ژنتیکی تعیین شده است. انجام چنین آناستنوزهایی عدم وجود یا وجود انعطاف پذیری نورون ها یا مراکز عصبی را در تنظیم عملکردها نشان می دهد. آیا عصب سیاتیک با بقیه ستون فقرات می تواند ماهیچه های تنفسی را کنترل کند یا خیر.

در آناستنوزهای عصبی عروقی، اندام‌های مؤثر رگ‌های خونی و بر این اساس، گیرنده‌های شیمیایی و بارورسیتی هستند که در آنها قرار دارند. آناستنوز را می توان نه تنها بر روی یک حیوان، بلکه بر روی حیوانات مختلف نیز انجام داد. به عنوان مثال، اگر آناستنوز عصبی عروقی در دو سگ در ناحیه کاروتید (انشعاب قوس شریان کاروتید) انجام شود، می توان نقش بخش های مختلف سیستم عصبی مرکزی را در تنظیم تنفس، خون سازی، تشخیص داد. و تون عروقی در همان زمان، حالت هوای استنشاقی در سگ پایینی تغییر می کند و تنظیم در سگ دیگر دیده می شود.

پیوند اعضای مختلف بدن. کاشت مجدد و برداشتن اندام ها یا قسمت های مختلف مغز (خروج). در نتیجه برداشتن یک عضو، کم کاری غده خاصی ایجاد می شود؛ در نتیجه کاشت مجدد، وضعیت عملکرد بیش از حد یا بیش از حد هورمون های یک غده خاص ایجاد می شود.

بیرون زدگی قسمت های مختلف مغز و قشر مغز عملکرد این بخش ها را آشکار می کند. به عنوان مثال، هنگامی که مخچه برداشته شد، مشارکت آن در تنظیم حرکت، در حفظ وضعیت بدن و رفلکس های استاتوکینتیک آشکار شد.

برداشتن بخش‌های مختلف قشر مغز به برادمن اجازه داد تا از مغز نقشه‌برداری کند. او پوست را با توجه به موارد عملکردی به 52 مزرعه تقسیم کرد.

روش قطع نخاع. به شما امکان می دهد اهمیت عملکردی هر بخش از سیستم عصبی مرکزی را در تنظیم عملکردهای جسمی و احشایی بدن و همچنین در تنظیم رفتار شناسایی کنید.

کاشت الکترون در قسمت های مختلف مغز.به شما امکان می دهد فعالیت و اهمیت عملکردی یک ساختار عصبی خاص را در تنظیم عملکردهای بدن (عملکردهای حرکتی، عملکردهای احشایی و ذهنی) شناسایی کنید. الکترودهای کاشته شده در مغز از مواد بی اثر (یعنی باید مسموم کننده باشند) ساخته شده اند: پلاتین، نقره، پالادیوم. الکترودها نه تنها اجازه می دهند عملکرد یک منطقه یا ناحیه دیگر را آشکار کنند، بلکه بالعکس، ثبت کنند که ظاهر در کدام قسمت از مغز باعث ایجاد پتانسیل (BT) در پاسخ به عملکردهای عملکردی خاص می شود. فناوری میکروالکترود به فرد این فرصت را می دهد که پایه های فیزیولوژیکی روان و رفتار را مطالعه کند.

کاشت کانولا (میکرو).پرفیوژن عبارت است از عبور محلول هایی با ترکیبات شیمیایی مختلف توسط جزء ما یا با حضور متابولیت ها در آن (گلوکز، پی وی سی، اسید لاکتیک) یا با محتوای مواد فعال بیولوژیکی (هورمون ها، هورمون های عصبی، اندورفین ها، انکفامین ها و غیره). کانولا به شما امکان می دهد محلول هایی با محتویات مختلف را به ناحیه خاصی از مغز تزریق کنید و تغییراتی را در فعالیت عملکردی در قسمت دستگاه حرکتی، اندام های داخلی یا رفتار، فعالیت روانی مشاهده کنید.

فناوری میکروالکترود و کونژوگاسیون نه تنها در حیوانات، بلکه در انسان در طی جراحی مغز نیز استفاده می شود. در بیشتر موارد، این کار برای اهداف تشخیصی انجام می شود.

معرفی اتم های نشاندار شده و مشاهده متعاقب آن بر روی یک توموگراف گسیل پوزیترون (PET)). اغلب، آئورو گلوکز با برچسب طلا (طلا + گلوکز) تجویز می شود. طبق بیان مجازی گرین، ATP اهداکننده انرژی جهانی در تمام سیستم های زنده است و در سنتز و سنتز مجدد ATP، گلوکز بستر اصلی انرژی است (سنتز مجدد ATP می تواند از کراتین فسفات نیز رخ دهد). بنابراین، مقدار گلوکز مصرفی برای قضاوت در مورد فعالیت عملکردی بخش خاصی از مغز، فعالیت مصنوعی آن استفاده می شود.

گلوکز توسط سلول ها مصرف می شود، در حالی که طلا استفاده نمی شود و در این ناحیه تجمع می یابد. با توجه به طلای چند فعال، مقدار آن بر اساس فعالیت مصنوعی و عملکردی ارزیابی می شود.

روش های استریوتاکتیکاینها روشهایی هستند که در آنها عمل جراحی برای کاشت الکترودها در ناحیه خاصی از مغز مطابق با اطلس استریوتاکسی مغز انجام می شود و پس از آن ثبت پتانسیل های زیستی سریع و آهسته اختصاص داده شده با ثبت پتانسیل های برانگیخته و همچنین ثبت می شود. ضبط EEG، میوگرام.

هنگام تعیین اهداف و مقاصد جدید، می توان از یک حیوان برای مدت طولانی مشاهده استفاده کرد، محل ریز عناصر را تغییر داد یا نواحی مختلف مغز یا اندام ها را با محلول های مختلف که نه تنها حاوی مواد فعال بیولوژیکی، بلکه متاتولیت ها نیز هستند، پرفیوژن کرد. سوبستراهای انرژی (گلوکز، کرئوتین فسفات، ATP).

روش های بیوشیمیاییاین گروه بزرگی از روش‌ها است که در سیالات، بافت‌ها و گاهی اندام‌ها در گردش، سطح کاتیون‌ها، آنیون‌ها، عناصر یونیزه (کلان و میکرو عناصر)، مواد انرژی‌زا، آنزیم‌ها، مواد فعال بیولوژیکی (هورمون‌ها و غیره) تعیین می‌شود. . این روش ها یا in vivo (در انکوباتورها) و یا در بافت هایی که به ترشح و سنتز مواد تولید شده در محیط جوجه کشی ادامه می دهند، اعمال می شوند.

روش های بیوشیمیایی امکان ارزیابی فعالیت عملکردی یک اندام خاص یا بخشی از آن و گاهی اوقات حتی کل سیستم اندام را فراهم می کند. به عنوان مثال، سطح 11-OCS می تواند برای قضاوت در مورد فعالیت عملکردی ناحیه فاسیکولار قشر آدرنال استفاده شود، اما سطح 11-OCS می تواند برای قضاوت در مورد فعالیت عملکردی سیستم هیپوتالاموس-هیپوفیز-آدرنال نیز مورد استفاده قرار گیرد. . به طور کلی، از آنجایی که 11-OCS محصول نهایی پیوند محیطی قشر آدرنال است.

روش های مطالعه فیزیولوژی GNI.کار ذهنی مغز برای مدت طولانی برای علوم طبیعی به طور کلی و فیزیولوژی به طور خاص غیر قابل دسترس باقی ماند. عمدتاً به این دلیل که بر اساس احساسات و تأثیرات قضاوت می شد، یعنی. با استفاده از روش های ذهنی موفقیت در این زمینه دانش زمانی تعیین شد که فعالیت ذهنی (GNA) با استفاده از روش عینی رفلکس های شرطی با پیچیدگی های مختلف توسعه مورد قضاوت قرار گرفت. در آغاز قرن بیستم، پاولوف روشی را برای ایجاد رفلکس های شرطی ابداع و پیشنهاد کرد. بر اساس این تکنیک، روش های اضافی برای مطالعه خواص GNI و محلی سازی فرآیندهای GNI در مغز امکان پذیر است. از بین تمام تکنیک ها، موارد زیر بیشترین استفاده را دارند:

آزمایش امکان تشکیل اشکال مختلف رفلکس های شرطی (به تناسب، به رنگ و غیره)، که به ما امکان قضاوت در مورد شرایط ادراک اولیه را می دهد. مقایسه این مرزها در حیوانات گونه‌های مختلف این امکان را فراهم می‌کند که مسیر تکامل سیستم‌های حسی GNA را آشکار کند.

مطالعه انتوژنتیکی رفلکس های شرطی. رفتار پیچیده حیوانات در سنین مختلف، هنگامی که مطالعه می شود، این امکان را فراهم می کند که مشخص شود در این رفتار چه چیزی ذاتی و چه چیزی اکتسابی است. به عنوان مثال، پاولوف توله هایی از همان بستر را گرفت و به برخی از آنها گوشت و برخی دیگر با شیر تغذیه کرد. پس از رسیدن به بزرگسالی، او رفلکس های شرطی را در آنها ایجاد کرد و معلوم شد که در سگ هایی که از کودکی شیر دریافت می کردند، رفلکس های شرطی برای شیر ایجاد می شد و در سگ هایی که از کودکی با گوشت تغذیه می شدند، رفلکس های شرطی به راحتی برای گوشت ایجاد می شد. . بنابراین، سگ ها ترجیح شدیدی برای نوع غذای گوشتخوار ندارند، نکته اصلی این است که کامل باشد.

مطالعه فیلوژنتیکی رفلکس های شرطی.با مقایسه ویژگی های فعالیت رفلکس شرطی حیوانات در سطوح مختلف رشد، می توان قضاوت کرد که تکامل GNI به چه سمتی می رود. به عنوان مثال، معلوم شد که سرعت تشکیل رفلکس های شرطی به شدت از بی مهرگان و مهره داران، در طول تاریخ رشد مهره داران نسبتاً ریز تغییر می کند، و به طور ناگهانی به توانایی فرد می رسد که بلافاصله رویدادهای همزمان را به هم متصل کند (نقوش)، چاپ کردن نیز وجود دارد. ویژگی پرندگان مولد (جوجه اردک های بیرون آمده از تخم ها می توانند هر شیئی را دنبال کنند: یک مرغ، یک شخص و حتی یک اسباب بازی متحرک. انتقال بین بی مهرگان - مهره داران، مهره داران - انسان منعکس کننده مراحل بحرانی تکامل مرتبط با ظهور و توسعه است. GNA (در حشرات، سیستم عصبی از نوع غیر سلولی است، در کولنترات ها - از نوع شبکه ای، در مهره داران - از نوع لوله ای، در پرندگان گانگلیون های توپی ظاهر می شود، برخی باعث توسعه زیاد فعالیت رفلکس شرطی می شوند... در انسان، قشر مغز به خوبی توسعه یافته است که باعث پرش می شود.

مطالعه بوم شناختی رفلکس های شرطی.پتانسیل عمل ناشی از سلول های عصبی درگیر در تشکیل اتصالات رفلکس، شناسایی پیوندهای اصلی رفلکس شرطی را ممکن می سازد.

به ویژه مهم است که شاخص های بیوالکترونیکی امکان مشاهده شکل گیری یک رفلکس شرطی در ساختارهای مغز را حتی قبل از اینکه در رفلکس های حرکتی یا رویشی (احشایی) بدن ظاهر شود، ممکن می سازد. تحریک مستقیم ساختارهای عصبی مغز این امکان را فراهم می کند که آزمایش های مدلی را در مورد تشکیل اتصالات عصبی بین کانون های مصنوعی تحریک تنظیم کنید. همچنین می توان به طور مستقیم تعیین کرد که چگونه تحریک پذیری ساختارهای عصبی شرکت کننده در آن در طی یک رفلکس شرطی تغییر می کند.

اثر فارماکولوژیک در طول تشکیل یا تبدیلمعامله رفلکس های شرطی. با وارد کردن مواد خاص به مغز می توان تعیین کرد که آنها چه تأثیری بر سرعت و قدرت تشکیل رفلکس های شرطی دارند، بر توانایی بازسازی رفلکس شرطی که امکان قضاوت در مورد تحرک عملکردی مرکز را ممکن می کند. سیستم عصبی، و همچنین وضعیت عملکردی نورون های قشر مغز و عملکرد آنها. به عنوان مثال، مشخص شد که کافئین هنگامی که سلول های عصبی بسیار کارآمد هستند، تشکیل رفلکس های شرطی را فراهم می کند، و زمانی که عملکرد آنها کم است، حتی یک دوز کوچک کافئین تحریک را برای سلول های عصبی غیرقابل تحمل می کند.

ایجاد یک آسیب شناسی تجربی فعالیت رفلکس شرطی. به عنوان مثال، برداشتن لوب های تمپورال قشر مغز با جراحی منجر به ناشنوایی ذهنی می شود. روش اکسترپاسیون اهمیت عملکردی مناطق قشر، زیر قشر و ساقه مغز را نشان می دهد. به همین ترتیب، محلی سازی انتهای قشر آنالایزرها تعیین می شود.

مدل سازی فرآیندهای فعالیت رفلکس شرطی. پاولوف همچنین ریاضیدانان را جذب کرد تا با فرمولی وابستگی کمی تشکیل یک رفلکس شرطی را به فرکانس تقویت آن بیان کنند. مشخص شد که در اکثر حیوانات سالم، از جمله انسان، پس از 5 بار تقویت با یک محرک بدون شرط، یک رفلکس شرطی در افراد سالم ایجاد شد. این امر به ویژه در پرورش سگ های خدماتی و در سیرک اهمیت دارد.

نقشه برداریتظاهرات روانی و فیزیولوژیکی رفلکس شرطی. حمایت از توجه داوطلبانه، پرواز، کارایی یادگیری.

مقایسه تظاهرات روانی و فیزیولوژیکی با عناصر زیستی و مورفولوژیکی با بیوکینتیک:تولید پروتئین های حافظه (S-100) یا مناطقی از مواد فعال بیولوژیکی در تشکیل رفلکس های شرطی. ثابت شده است که اگر فرآیند عروقی معرفی شود، رفلکس های شرطی سریعتر ایجاد می شوند (فشار عروقی یک هورمون عصبی است که در هیپوتالاموس تولید می شود). تغییرات مورفولوژیکی در ساختار یک نورون: یک نورون برهنه در بدو تولد و با دنوریت در یک بزرگسال.

آزمایشگاه شماره 1

موضوع:روشهای حذف و کاشت مجدد

هدف:آشنایی با روش های ریزش و کاشت مجدد غدد پاراتیروئید. مدل سازی کم کاری و هیپرپاراتیروئیدیسم

تجهیزات:حیوانات آزمایشگاهی (5 موش)، دستگاه انعقاد الکتریکی، موچین، قیچی، چاقوی جراحی، ید، سوزن دوخت پوست، مواد بخیه، میز عمل، اتر بیهوشی، قیف.

پیش رفتن

کار 1.مدل سازی کمبود هورمون پاراتیروئید در موش صحرایی

کمبود هورمون های پاراتیروئید با برداشتن هر دو غده پاراتیروئید با استفاده از دستگاه الکتروسرجری با فرکانس بالا EH-30 ایجاد می شود. اصل کار دستگاه به شرح زیر است: به دلیل جریان فرکانس بالا، بافت ها به سرعت گرم می شوند و محتویات سلول ها تبخیر می شوند. این دستگاه در 2 حالت "برش" و "انعقاد" کار می کند. حذف غدد در حالت انعقاد با یک الکترود نازک اتفاق می افتد، d تقریباً برابر با اندازه PTG است. برای انعقاد غدد، تماس 1-1.5 ثانیه کافی است. در حالت برش، غدد را می توان از بین برد. از مزایای انعقاد در مقایسه با PTG extilation این است که از دست دادن خون حذف می شود و بافت تیروئید آسیب نمی بیند. دوره بعد از عمل 2 هفته.

کار 2.مدل سازی هورمون های پاراتیروئید اضافی در موش صحرایی

برای شبیه سازی هیپرپاراتیروئیدیسم از روش پیوند PTG استفاده شد. ماهیت روش در پیوند موش های دریافت کننده زیر پوست گردن 3 جفت PTG از 3 موش اهدا کننده نهفته است. موش های اهداکننده باید تقریباً هم وزن موش های دریافت کننده باشند.

اهداکنندگان تحت بیهوشی اتر یک برش پوستی در ناحیه تراکم قدامی گردن به طول 2-3 سانتی متر ایجاد می کنند، بنابراین ماهیچه ها به صورت صاف از هم جدا می شوند و PTG را در دسترس قرار می دهند. در این حالت، موش اهدایی در زیر قیف قرار می گیرد و به بیهوشی اتر ادامه می دهد. قبل از عمل، حیوان دریافت‌کننده به پشت روی میز جراحی ثابت شد و همچنین در موش‌های اهداکننده، یک برش پوستی به طول 2 تا 3 سانتی‌متر در ناحیه تراکم قدامی گردن ایجاد شد. سپس؟ 6 برش کم عمق با چاقوی جراحی در بافت زیر جلدی ایجاد شد که به عنوان نوعی سلول برای PTG پیوندی عمل می کرد. سپس، PTGها به سرعت از 3 موش اهداکننده جدا شدند و در برش های آماده شده در موش گیرنده قرار داده شدند. برش پوست گیرنده با ابریشم جراحی بخیه شد و با ید درمان شد. در روزهای بعد، زخم جراحی اصلاح شد. بهبودی کامل زخم پس از 7-8 روز مشاهده شد. PTG های پیوندی به خوبی ریشه می گیرند. این مدل پارت. هورمون ها به شما این امکان را می دهند که به دلیل بخار طبیعی، سطح خون آن را به صورت شبانه روزی افزایش دهید. هورمون

تکلیف برای کار مستقل.

وضعیت حیوانات عمل شده را تا زمان بهبودی کامل زخم و بردن مجدد آنها به آزمایش مشاهده کنید.

پس از 2 هفته، سطح کلسیم کل در حیوانات عمل شده را تعیین کنید که به طور غیر مستقیم نشان دهنده فعالیت عملکردی PTG و سلول های c غده تیروئید است و همچنین سطح 11-OKS که هر دو در پاسخ به استرس تغییر می کند. قرار گرفتن در معرض جراحی و در پاسخ به اختلال عملکرد PTG (به طور دقیق تر به اختلال هموستاز کلسیم).

آزمایشگاه شماره 2

کار 1.اوفورکتومی دوطرفه.

برای مطالعه الکتروژن‌ها در فعالیت تطبیقی ​​بدن، موش‌های ماده تحت اوفورکتومی دوطرفه قرار گرفتند. این عملیات مطابق با توصیه های مندرج در کتابچه راهنمای Bunok، 1968 انجام می شود.

حیوانات با اتر بیهوش شدند و روی میز عمل در وضعیت خوابیده قرار گرفتند. پشم روی شکم از جناغ تا ناحیه شرمگاهی بریده شد و پوست با الکل درمان شد. با چاقوی جراحی، برای اینکه به روده ها آسیبی نرسد، برش طولی به طول 4-5 سانتی متر در امتداد خط مضر شکم ایجاد شد. با یافتن شاخ راست یا چپ رحم، کاوش بیشتر در امتداد آن در امتداد مجرای تخمدان، تخمدان را پیدا می کنیم. رباط قسمت بالایی مجرای تخمدان و رباط حامی تخمدان را سوراخ می کنیم و بعد از آن پیشانی را با قیچی برش می دهیم. تخمدان دوم نیز به همین روش برداشته شد. پس از آن، ماهیچه ها و انتهای آن بخیه شد و بخیه با تنتور ید 5 درصد درمان شد.

پس از عمل، حیوانات در یک قفس تمیز قرار داده شدند، در طی 4-5 روز اول زخم هر روز با مواد ضد عفونی کننده درمان می شد. بهبود زخم در 8-10 روز اتفاق افتاد.

کار 1.آدرنالکتومی یک طرفه

برای شبیه سازی کمبود گلوکوکورتیکوئید درون زا در حیوانات تحت AE (آدرنالکتومی).

عمل جراحی برداشتن یک غده فوق کلیوی طبق روش ارائه شده در دفترچه راهنمای کاباک یا.م انجام شد. این عمل تحت بیهوشی اتر انجام شد. موش بر روی میز عمل در وضعیت مستعد ثابت شد. در سمت چپ ستون فقرات، مو بریده شد و ناحیه جراحی با ید درمان شد. برش پوست و عضلات در فاصله 1 سانتی متری سمت چپ ستون فقرات ایجاد شد و 1.5 سانتی متر از قوس دنده ای به سمت پایین عقب نشینی کرد. در مرحله بعد، یک برش کوچک عضلانی با قلاب گسترش داده شد. غده آدرنال همراه با بافت چربی اطراف و طناب بافت همبند با فورسپس آناتومیک گرفته و خارج شد. زخم جراحی به صورت لایه ای بخیه شد.

در دوره بعد از عمل، هر زخم روزانه با مواد ضد عفونی کننده درمان می شد. بهبودی پس از 5-7 روز رخ داد.

نتیجه: تخمدان و آدرنالکتومی به طور همزمان منجر به کاهش شدید توانایی های انطباقی حیوانات به دلیل عدم تعادل هورمونی (ناکارآمدی غدد فوق کلیوی منجر به هیپوکارتیسیسم و ​​هیپواستروژنی) و مرگ در روز نهم پس از عمل شد.

آزمایشگاه #3

موضوع:روشهای تجویز داروهای دارویی به حیوانات آزمایشگاهی روش های آزمایش

هدف:با روش ها و روش های تجویز داروها و انواع بارهای خوراکی و تزریقی به حیوانات آزمایشگاهی آشنا شوید.

تجهیزات:سرنگ برای تجویز خوراکی، داخل عضلانی و داخل رحمی، مواد دارویی یا بار آبی، 2 قیف با درپوش، 2 لوله جمع آوری ادرار (آرامش)، 2 پوشک، محلول پتویترین (حاوی هورمون ضد ادرار - وادوپرسین)، نمک، آب مقطر.

پیش رفتن

کار 1.تأثیر آب و بار هیپرسوماتیک بر دیورز. اثر هورمون آنتی دیورتیک بر دیورز.

موش ها را وزن کرده و وزن بدن را یادداشت کنید. سپس با تزریق خوراکی به موش ها آب بدهید. برای انجام این کار، موش را در یک سه پایه "نرم" آویزان کنید، آن را قنداق کنید، آب گرم (37 درجه سانتیگراد) را به سرنگ متصل به پروب به میزان 5٪ وزن بدن بکشید. موش را به صورت عمودی نگه دارید، پروب را وارد دهان کنید و با احتیاط آن را به داخل معده حرکت دهید تا متوقف شود، پس از آن آب به تدریج از سرنگ خارج می شود. سپس به یک موش پتویترین به میزان 20 میلی لیتر در 100 گرم وزن بدن تزریق می شود. پس از آن، هر دو موش در قیف قرار داده شده و ادرار به مدت 1 ساعت جمع آوری می شود. پتویترین به صورت عضلانی تجویز می شود. برای این منظور پوست سر را با کورتسنگ می گیرند و همزمان با یک دست هم کورتسان و هم دم موش را می گیرند و سعی می کنند موش با هر 4 پنجه و ابعاد آن سطح میز را لمس کند. با ابعاد فیزیولوژیکی مطابقت دارد. با دست دوم، تزریق به ران (عضلات) انجام می شود، در حالی که پای عقبی با دم نگه داشته می شود.

نتیجه: بدون پتویترین: 1.2 میلی لیتر، با پتویترین 0.7 میلی لیتر، یعنی. پتویترین باعث احتباس آب در بدن می شود.

روش تجویز تزریقی.هنگامی که مواد تجویز شده باید در اسرع وقت وارد گردش خون عمومی شوند و در مواردی که حجم داروهای تجویز شده از دوزهای مجاز برای تجویز عضلانی بیشتر شود استفاده می شود. با روش تزریق تزریقی، حجم می تواند به 5 سانتی متر مکعب برسد. به صورت تزریقی، بهتر است محلول های روغنی مواد دارویی تجویز شود.

با تجویز تزریقی، حیوان به صورت وارونه نگه داشته می شود، حیوان نباید به شدت در حالت خمیده حرکت کند. برای این منظور حیوان را با کورزانگ پشت سر و با دست ها پشت دم ثابت می کنند. با کمک موچین آناتومیک یا یک گیره کوچر کوچک، دیواره شکم کشیده می شود، در حالی که اندام های شکمی پایین می روند، سپس دیواره شکم را سوراخ می کنم، 2 سوراخ را ثابت می کنم: 1 سوراخ از طریق پوست، 2 سوراخ از طریق دیواره عضلانی صفاق. پس از آن، دارو به داخل حفره شکم تزریق می شود. گواه تجويز صحيح دارو در حفره شكمي، عدم وجود عوارض در حفره شكمي و فعال بودن حيوان پس از تزريق به شرط تجويز مواد غير مخدر است. با یک سوراخ، تزریق زیر جلدی خواهد بود.

آزمایشگاه #4

موضوع:روش های آزمایش بیولوژیکی

هدف:برای آشنایی با روش های آزمایش بیولوژیکی فعالیت عملکردی سیستم هیپوتالاموس-هیپوفیز-آدرنال.

تجهیزات:غده هیپوفیز موش گیرنده، هیپوتالاموس موش گیرنده، موش اهداکننده، معرف های مورد نیاز برای تهیه عصاره هیپوفیز و هیپوتالاموس، پنس، گیره کوچر، سرنگ داخل وریدی، قیچی، هپارین، لوله های جمع آوری خون، پایه، تعادل پیچشی، حمام آب، دماسنج، اتر برای بیهوشی

پیش رفتن

کار 1.تعیین محتوای کورتیکوتروپین در غده هیپوفیز.

چشم انداز این روش تعیین افزایش حجم 11-OCS در پلاسمای خون موش های دریافت کننده است. پس از انجام آزمایش عصاره هیپوفیز به آنها. برای تعیین محتوای کورتیکوترپین، یک منحنی نوسانی از ابتدا ساخته شده است.

روش تعیین: غده هیپوفیز روی ترازوی پیچشی وزن شده و به مدت 10 روز در جعبه ای با استون بی آب قرار داده شد. سپس هیپوفیز وزن شده و به طور کامل در 100 میلی لیتر اسید استیک گلاسیال تراش داده شد. چوب با همان مقدار اسید استیک آبکشی شد. پس از آن، فنجان در یک حمام آب قرار گرفت و در دمای 70 درجه سانتیگراد به مدت 30 دقیقه تبخیر شد. عصاره به دست آمده در 2 میلی لیتر بی تقطیر رقیق شد و با 1 مولار NaHCO 3 خنثی شد، سپس با محلول کربس رینگر حاوی بی کربنات و گلوکز به وزن مورد نظر رقیق شد. هنگام رقیق کردن عصاره هیپوفیز، در نظر گرفته شد که 100 میکروگرم پودر استون دار باید به یک موش گیرنده داده شود.

آزمایش بیولوژیکی برای تعیین محتوای کورتیکوتروپین در غده هیپوفیز ترجیحاً بر روی موش های صحرایی نر انجام می شود. در روز قبل از آزمایش، به موش‌ها به صورت زیر جلدی پردنیزون به میزان 6 میلی‌گرم به ازای هر 100 گرم وزن بدن تزریق شد. دوز مشخص شده کورتیکواستروئید توسط اصل بازخورد، سیستم هیپوفیز-آدرنال موش های دریافت کننده را مسدود می کند و ترشح درون زا کورتیکوتروپین را متوقف می کند. یک روز بعد، سطح 11-OCS در پلاسمای خون در موش ها تعیین می شود. مقدار مورد نیاز عصاره هیپوفیز به صورت داخل وریدی تجویز شد و سطح 11-OCS 1 ساعت پس از تجویز عصاره هیپوفیز مورد آزمایش به موش‌های دریافت‌کننده مجدداً تعیین شد. با استفاده از منحنی "لگاریتم اثر دول"، محتوای کورتیکوتروپین در غده هیپوفیز موش آزمایشگاهی در بافت عسل در 100 میلی‌گرم بر متر تعیین شد.

آزمایشگاه #5

موضوع:روش های بیوشیمیایی در فیزیولوژی

درس 1.تعیین 11-OCS در پلاسمای خون.

هدف:برای تعیین تغییر در حجم 11-OCS در پلاسمای خون پس از قرار گرفتن در معرض مداخله جراحی در یک آزمایش فیزیولوژیکی.

روش شناسی: 1. 1-1.5 میلی لیتر خون از حیوان (از ورید دم یا ورید فمورال) بگیرید.

2. خون را به مدت 10 دقیقه با دور 2000 سانتریفیوژ کنید.

3. پلاسما را از عناصر تشکیل شده جدا کرده و با درپوش زمینی به لوله آزمایش انتقال دهید. پلاسما باید 1 میلی لیتر باشد یا با دو تقطیر به این مقدار برسد.

4. 6 میلی لیتر هگزان را به لوله آزمایش اضافه کنید، به مدت 20 ثانیه تکان دهید. این باعث حذف کلسترول از پلاسما می شود. هگزان مصرف شده را با پمپ آب جت حذف کنید.

5. کلروفرم 10 میلی لیتر را اضافه کنید، به مدت 1 دقیقه تکان دهید. در این حالت کورتیکواستروئیدها در کلروفرم حل می شوند. بخش پلاسما باقی مانده را با یک پمپ بردارید.

6. عصاره را با محلول NaOH 0.1 مولار بشویید و 1 میلی لیتر به آن اضافه کنید. به مدت 1 دقیقه تکان دهید و با پمپ آب جت بردارید.

8. پس از آن، 8 میلی لیتر از عصاره را بردارید و آن را به یک لوله آزمایش تمیز و خشک با درب آسیاب شده منتقل کنید.

9. 6 میلی لیتر مخلوط الکل مطلق (اتیل) با H 2 SO 4 را به عصاره اضافه کنید که در آزمایش ساوامو مقاومت می کند. نسبت الکل و اسید 1:3 است (3 الکل و 1 اسید). 1 دقیقه تکان دهید و یک ساعت در جای سرد در جای گرم بگذارید. در همان زمان، کورتیکواستروئیدها در مخلوطی از اسید و الکل حل می شوند. پس از آن حجم 11-OKS با استفاده از اسپکتروفتومتر Kvant تعیین می شود.

تجهیزات:مجموعه دوتایی لوله های درپوش دار، قفسه ها، لوله های سانتریفیوژ، پمپ جت آب، پیپت های 3×1 میلی لیتری، پیپت های 2×10 میلی لیتری، پیپت های 1×6 میلی لیتری.

معرف ها: دو تقطیر، هگزان، محلول NaOH 0.1، کروروفرم، اتانول 100%، H 2 SO 4 طبق Sawamo (100%).

روش‌های بررسی وضعیت عاطفی در موش‌های صحرایی

1. تست میدان باز

دوره نهفته خروج از میدان مرکزی، تعداد خطوط متقاطع، جایگاه های عمودی، سوراخ های معاینه شده، شستشوها، اجابت مزاج. با طول مدت دوره نهفته خروج از میدان مرکزی و تعداد خطوط متقاطع، فعالیت حرکتی با تعداد قفسه های عمودی و سوراخ های بررسی شده مورد قضاوت قرار گرفت - با فعالیت اکتشافی، تعداد شستشوها نشان دهنده یک حالت عاطفی است و توسط تعداد دفعات، اضطراب قضاوت شد.

2. روش چند پارامتری برای تعیین وضعیت اضطراب-فوبیک موش صحرایی

هدف:ویژگی های پیچیده سطح اضطراب-فوبیک فردی حیوان را ارزیابی کنید.

روش شناسی:این مطالعه در یک میدان باز و تحت نور الکتریکی 3000 لوکس در یک زمان ثابت انجام شده است.

تست 1. دوره نهفته نزول از ارتفاع. این تست برای ارزیابی رفتار تدافعی شدید در موش ها استفاده می شود. موش‌ها روی یک محفظه مداد ساخته شده از مواد مات به ابعاد 20x14x14 سانتی‌متر قرار می‌گیرند و زمانی که موش با هر 4 پنجه زمین را لمس می‌کند، زمان فرود از جعبه مداد مشخص می‌شود.

تست 2. دوره نهفته عبور از سوراخ. موش در یک محفظه شفاف قرار می گیرد، که در دو قسمت با یک سوراخ 7x10 سانتی متری در پارتیشن تقسیم شده است. زمانی که موش با هر دو پنجه به محفظه 2 صعود کند، این عمل تکمیل شده در نظر گرفته می شود. اگر هنگام انجام یک عمل، نگاه کردن به یک سوراخ یا انتقالی که شروع شده است اما تکمیل نشده است تردید وجود داشته باشد، امتیاز 0.5 است.

تست 3. زمان خروج از خانه است. حیوان را در یک خانه پلکسی شفاف 16x15x12 سانتی متر قرار می دهند و خروجی را با دمپر به مدت 15 دقیقه بسته می کنند. شمارش زمان از لحظه باز شدن خروجی شروع می شود. در تست 1-3، موش از محیط آزمایشی زودتر از 20 دقیقه پس از انجام عمل مربوطه یا پس از انقضای زمان آزمایش (180 ثانیه) در صورت عدم انجام عمل بازگردانده شد. فاصله بین تست ها حداقل 15 دقیقه است.

تست 4. از مرکز میدان باز خارج شوید. این تست به شما امکان می دهد واکنش های ترس مرتبط با کاهش فعالیت حرکتی را شناسایی کنید. آزمایش با قرار دادن موش در مرکز زمین آغاز شد و از آن لحظه به بعد، زمان بازدید حیوان از 4 میدان مرکزی ثبت شد.

برای آزمون های 1-4، نمرات مطابق با مقیاس داده شد:

	زمان اجرا، s
	بدون نزول بیش از 180
	بالای 180 نیست

تست 5 ارزیابی عملکرد واکنش پاشنه به طور خود به خود و با تغییر شدید در روشنایی در یک محیط باز. 180 ثانیه پس از لحظه ای که حیوان در میدان روشنایی قرار گرفت، نور به طور ناگهانی تغییر کرد: نور روشن خاموش شد و یک لامپ ساده به مدت 60 ثانیه روشن شد، سپس روشنایی دوباره برقرار شد. برای 300 ثانیه مشاهده، فاصله اندازه‌گیری شده در مربع‌هایی که حیوان روی آن پشتیبان می‌گرفت، تعیین شد. بدون تغییر 0 امتیاز، نیم مربع - 1 ب، تا 2 مربع - 2 ب، بیش از 2 مربع - 3 ب.

تست 6. باد کردن-2. تلاش آزمایشگر برای بلند کردن حیوان. همچنین قدردانی شد.

تست 7. واکنش صدا.

تست 8. واکنش انجماد. حیوان در حالت تنش روی پاهای صاف یا چسبیده به زمین، گاهی اوقات با گوش های صاف و چشمان بسته یخ می زند.

تست 9. فشار دادن گوش ها.

آزمایشات 6-9 با نزدیک شدن تدریجی دست آزمایشگر از کنار پوزه انجام می شود تا موش بتواند دست را ببیند. نزدیک شدن دست به حیوان 2-3 بار پشت سر هم انجام می شود. مقطع تحصیلی:

0 ب. - بدون واکنش

1 ب. - واکنش هنگام نوازش

2 ب. - واکنش هنگام نزدیک شدن به دست

3b. - واکنش پس از برداشتن دست ادامه دارد

در صورت وجود واکنش های خود به خودی در تست های 7-9، 3 امتیاز اضافی برای هر کدام اضافه شد. سپس، نمره کل برای همه آزمون ها محاسبه شد که برای قضاوت در مورد سطح کلی اضطراب (شاخص جدایی ناپذیر اضطراب IPT) استفاده شد.

نتیجه گیری در مورد گلوکز: پس از ساخت منحنی کالیبراسیون (که با 10 اندازه استاندارد تعیین می شود)، مشخص شد که خون حیوان آزمایشی حاوی 42 میلی متر (لیتر گلوکز) است.

مطالعه مکانیسم‌های فیزیولوژیکی رفتار حیوانات به شدت در حال توسعه‌ترین زمینه دانش است که در کشور ما به طور سنتی به عنوان فیزیولوژی فعالیت عصبی بالاتر از آن یاد می‌شود. علاقه به این علم در دهه های اخیر به طور قابل توجهی افزایش یافته است، در درجه اول به دلیل نیازهای مدل سازی فنی سیستم ها و فرآیندهای مغز، متحد در مفهوم هوش مصنوعی. به طور طبیعی، علم مکانیسم های مغزی رفتار و روان با ایده های سایبرنتیک غنی شد، حوزه های جدیدی از تحقیقات شکل گرفت - بیونیک، نوروسیبرنتیک و غیره.

مطالعه مبانی فیزیولوژیکی رفتار

تکامل گونه ها نتیجه سازگاری بهتر با شرایط متغیر محیطی است.ارگانیسم های بالاتر تنها در محدوده نسبتاً باریکی از عوامل فیزیکی (دما، تشعشع، گرانش) و شیمیایی (ذخایر متابولیت ها، الکترولیت ها و آب، ترکیب اتمسفر) وجود دارند که توسط خواص مورفولوژیکی و متابولیکی تعیین شده ژنتیکی تعیین می شود. اشکال ایستا سازگاری با سازگاری های دینامیکی دائمی در حال تغییر ارگانیسم با محیط تکمیل می شود. این رفتار، به معنای وسیع کلمه، مبتنی بر تنظیم فعالیت متابولیک به طور کلی و بر کنترل سیستم های اجرایی خاص به طور خاص است. ماهیچه‌ها و غدد مهم‌ترین ارگان‌های اجرایی هستند که تقریباً تمام اشکال رفتار ارگانیسم‌های بالاتر را فراهم می‌کنند. بدن به گیرنده های مختلفی مجهز است که می توانند ویژگی های محیط را درک کرده و آنها را به اطلاعات معنی دار تبدیل کنند. رفتار توسط محیط تعیین می‌شود و توسط مکانیسم‌های مرکزی که اطلاعات دریافتی را ارزیابی می‌کنند و مناسب‌ترین پاسخ‌ها را تشکیل می‌دهند، واسطه می‌شوند.

هدف اصلی رفتار تضمین بقای یک فرد یا گونه است.اعمال رفتاری را می توان خودسرانه به دو دسته تقسیم کرد واکنش های چشایی،با هدف دستیابی به شرایط خارجی لازم (به عنوان مثال، ذخیره یا خوردن غذا، جفت گیری)، و واکنش های علامت مخالف،شامل در رفتنیا اجتناب از عوامل مضر(به عنوان مثال دما، تشعشع، آسیب مکانیکی)، عوامل محیطی اغلب شکل می گیرند تداوم،محدوده خاصی که حیوان ترجیح می دهد، در حالی که محدوده دیگری از آن اجتناب می کند. حیوان در یک گرادیان چند بعدی از عوامل محیطی حرکت می کند تا مقدار کل محرک های درک شده را بهینه کند (به عنوان مثال، زمانی که دسترسی به غذا فقط در محدوده دمای نامطلوب یا محرک های مکانیکی بهینه یا حتی مضر امکان پذیر است).

چنینطرح روابط بین موجودات و محیط زیست حاکی از وجود است دولت های مرکزی فرضی(مثلا، حرکت، انگیزه)که رفتارهای خاصی را اجرا و پشتیبانی می کنند. فرض بر این است که بدن مدلی از بهینه حالات داخلی (و خارجی) دارد و هر رفتاری بسته به کاهش یا افزایش اختلاف بین این مدل و حالت واقعی به طور مداوم ارزیابی می شود. شرایط محیطی مهمی که ارگانیسم برای رسیدن به آن تلاش می کند مشوق های جذاب وکسانی که از آنها اجتناب می شود) هستند محرک های نفرت انگیزاصلاح و کنترل رفتار (شرطیسازی عامل)با ارائه محرک های جذب کننده یا حذف محرک های بد به ترتیب نامیده می شوند. مثبتیا تقویت منفی.ترکیب رفتار معین با محرک های بد نامیده می شود مجازاتو منجر به سرکوب این رفتار می شود.

در کنار پاسخ به این سوال که چرا یک حیوان عمل می کند، به همان اندازه مهم است که بدانیم چگونه عمل می کند. تئوری بازتابی که توسط دکارت در قرن هفدهم ارائه شد، بر تفکر فیزیولوژیست ها و روانشناسان تأثیر گذاشت و هنوز هم نقطه شروع مهم فیزیولوژی عصبی مدرن است. مجموعه رفتاری اساسی به طور صلب در شبکه های عصبی خاصی تعبیه شده است که یک پاسخ خاص (پاسخ غیرشرطی - BR) را با یک محرک خاص (محرک غیرشرطی - BS) متصل می کند. اینها مادرزادی(در طول آموزش به دست نمی آید) واکنش هاتکمیل می شوند واکنش های اکتسابی (شرطی)بر روی محرک‌های اولیه خنثی، که با تکرار ترکیبات با BR، به محرک‌های شرطی (CS) تبدیل می‌شوند، یعنی سیگنال‌های رویکرد مکانی و/یا زمانی BR (پاولوف، 1927).

اگر رفتار ذاتی منعکس کننده پاسخ های رمزگذاری شده ژنتیکی است که توسط نسل ها در فرآیند انتخاب طبیعی به دست آمده است، در این صورت رفتار اکتسابی فردی با تجربیاتی که در حافظه ارگانیسم ثبت شده است مرتبط است. توالی رویدادهای بیرونی و/یا درونی که یک حیوان در آن شرکت می‌کند می‌تواند باعث تغییرات کم و بیش دائمی در سیستم عصبی آن شود که زمینه‌ساز پاسخ به محرک‌های قبلی بی‌اثر است. فرآیند مربوطه، نامیده می شود یادگیری،منجر به انباشت تجربه در قالب ردپای حافظه (engrams) می شود که بازیابی آن بر رفتار حیوان تأثیر می گذارد. مهارت هایی که دیگر شرایط جدید را ندارند از بین می روند و مهارت هایی که مدت هاست اصلا استفاده نشده اند ممکن است فراموش شوند.

تعامل بین ارگانیسم و ​​محیط می تواند متفاوت باشد که با اشکال خاصی از رفتار مطابقت دارد. اگر یک رفتار پاسخشامل واکنش‌هایی است که توسط محرک‌های مجزا مانند درد، غذا برانگیخته می‌شود، سپس رفتار عملی می‌تواند توسط نیازهای درونی تحریک شود و شامل تجلی خود به خود واکنش‌های مختلف است که در نهایت منجر به تغییر مطلوب در محیط می‌شود (مثلاً دسترسی به غذا). .

چنین فرم هایی رفتار اکتسابیبر تفاوت های بین شرطی سازی کلاسیک و ابزاری تأکید کنید: در مورد اول، ایالات متحده، به عنوان یک قاعده، همان واکنش BS را ایجاد می کند (بزاق ناشی از US صوتی ارائه غذا). وجود یا عدم وجود یک پاسخ شرطی توسعه یافته بر اساس نوع کلاسیک بر احتمال استفاده از BS تأثیر نمی گذارد. واکنش های ابزاری معمولاً به طور قابل توجهی با واکنش های بدون شرط مربوطه متفاوت است، با کمک واکنش های ابزاری، دسترسی به محرک های جذب کننده باز می شود یا برعکس، حیوان از محرک های بد اجتناب می کند (به عنوان مثال، فشار دادن اهرم تقویت شده توسط غذا، اجتناب از محرک های دردناک با پریدن). به عنوان یک قاعده، شرطی سازی ابزاری بر پاسخ های حرکتی عضلات اسکلتی تأثیر می گذارد، در حالی که شرطی سازی کلاسیک به عملکردهای خودمختار انجام شده توسط عضلات و غدد احشایی محدود می شود. با این حال، استثناهای زیادی برای این قاعده وجود دارد.

در روانشناسی سنتی پاسخ محرک (به عنوان مثال، همانطور که اسکینر (1938) پیشنهاد کرد، تجزیه و تحلیل رفتاری شامل ایجاد یک سیستم از قوانین مربوط به شرایط ورودی (محرک) به حالت های خروجی (واکنش) است. بنابراین، فرآیندهای فرضی در مراکز عصبی یا مکانیسم‌های فرضی مغز مفهومی در نظر گرفته نمی‌شوند. در حالی که رویکرد جعبه سیاه سهم قابل توجهی در درک ما از نقش محیط در کنترل رفتار داشته است، اما فقط درک ما از ساختار داخلی و عملکرد این جعبه سیاه، یعنی مغز، در مورد مبدل یا اندام میانجی بین ورودی و خروجی دومی حوزه تحقیقات متخصصان - فیزیولوژیست ها و روانشناسان و حوزه رشته های مختلف مختلف (نوروفیزیولوژی، فارماکولوژی، نوروشیمی) است که بخشی از مجموعه علوم اعصاب است. در فیزیولوژی عصبی، پیشرفت قابل توجهی در زمینه تجزیه و تحلیل رفلکس های ساده بدون قید و شرط نخاع انجام شده است. درک رفلکس کشش یا فلکشن به قدری دقیق است که می توان به طور دقیق گسترش جریان آوران تکانه ها را از ریشه های پشتی در نخاع تا تشکیل یک انفجار وابران در ریشه های شکمی ردیابی کرد. مفهوم یک رفلکس شرطی (CR) که توسط پاولوف معرفی شد، استفاده از همان رویکرد تحلیلی را برای رفلکس‌های شرطی کلاسیک ممکن می‌سازد. با این حال، حتی ساده‌ترین SD‌ها هنوز تشخیص پیوند پلاستیکی تعیین‌کننده مسئول تغییر جریان SS به مسیر BR را ممکن نمی‌سازند. به همان اندازه که مکانیسم های عصبی درگیر در شرطی سازی عامل (بازتاب های شرطی ابزاری) نامشخص است.

روش های اصلی برای مطالعه مکانیسم های عصبی رفتار عبارتند از حذف، تحریک، ثبت الکتریکی و تجزیه و تحلیل شیمیایی. مثلا:

(یک مکان ساختارهای عصبیکه مسئول یک رفتار خاص است، می‌توان با حداکثر حذف نواحی مغزی که این رفتار ادامه دارد، و/یا با حداقل حذف، که در آن ناپدید می‌شود، ایجاد کرد. محاصره عملکردی مراکز عصبی می تواند به همین منظور عمل کند.

(ب) بستر عصبی واکنش را می توان با یافتن مساحت و پارامترهای بهینه تحریک الکتریکی و شیمیایی آن که باعث همان واکنش می شود، تجزیه و تحلیل کرد.

(ب) فعالیت الکتریکی همراه با یک عمل رفتاری ممکن است منعکس کننده فرآیندهای مهم برای اجرای آن باشد. روش‌های الکتروفیزیولوژیک را می‌توان برای تشخیص انتشار تکانه‌های آوران در مغز، فعالیتی که قبل از وقوع یک پاسخ خارجی انجام می‌شود، یا برای ارتباط احتمال و/یا بزرگی یک پاسخ رفتاری و الکتریکی استفاده کرد.

(د) فعال سازی و اصلاح احتمالی مدارهای عصبی ناشی از یادگیری ممکن است در تغییرات موضعی در متابولیسم واسطه ها، اسیدهای نوکلئیک و پروتئین ها منعکس شود.

تحقیقات نوروفیزیولوژیکی با در نظر گرفتن پویایی رفتار و سازماندهی مکانی-زمانی فعالیت مغز انجام می شود. کسب یک تجربه جدید که منجر به تشکیل یک انگرام (یادگیری) می شود، می تواند با مشارکت شبکه های عصبی متفاوت از آنهایی که در بازتولید بعدی تجربه ثبت شده دخیل هستند، انجام شود. محل انباشت اطلاعات می تواند نقطه همگرایی مکانیسم های جداگانه برای نوشتن و خواندن باشد. اثربخشی کسب تجربه و بازتولید آن به عواملی مانند میزان بیداری، انگیزه و احساسات بستگی دارد. همه این متغیرها باید هنگام توضیح تغییرات رفتاری ناشی از تحریک و تخریب و توضیح رابطه بین تغییرات رفتاری، الکتریکی یا بیوشیمیایی در نظر گرفته شوند. تمایز بین مکانیسم های خاصی که در یک کلاس کامل از واکنش ها مشترک هستند (مثلاً اشتها آور و بد) بسیار دشوار است.

توصیف کلی ساختارهای عصبی درگیر در اشکال مختلف رفتار شرط لازم برای مطالعه دقیق تغییرات سلولی و مولکولی است که زمینه ساز سازماندهی مجدد پلاستیکی شبکه های عصبی است. ریزروش‌های الکتروفیزیولوژیکی، عصبی شیمیایی و مورفولوژیکی موجود به‌طور کامل این نیاز را برآورده می‌کنند، مشروط بر اینکه در زمان مناسب و در پیوندهای ضروری مورد استفاده قرار گیرند. ایجاد یک مدل رفتاری مناسب برای کاربرد مؤثر روش‌های خرد، پیش‌نیاز موفقیت سریع بیشتر است. در این بین، تحقیقات بر سازماندهی عملکردی شبکه‌های عصبی درگیر در فرآیندهای مختلف مانند پردازش حسی، انگیزش، تشکیل ردیابی حافظه، مکان‌یابی انگرام و غیره متمرکز است.

طراحی آزمایش ها

برای برنامه ریزی آزمایش ها، شناخت اصول و تاکتیک های تحقیق، رویکرد علمی که به بهترین وجه در اجرای مستقیم آزمایش ها شکل می گیرد، ضروری است. این کتاب راهنمای عملی برای انجام آزمایشات است. فرض بر این است که خواننده با اصول اولیه آمار آشنا است. توصیه‌های عملی مقدماتی در مورد انجام آزمایش‌های فیزیولوژی رفتاری را می‌توان در Sidowski و Lockard (1966) و Weiner (1971) یافت. در ادامه شرح مختصری ارائه شده است که هدف آن جهت دهی دانش آموزان به برخی از مشکلات دشوار مربوط به طراحی آزمایش ها و اجرای آنها است.

مزیت مطالعه آزمایشگاهی نسبت به مشاهده طبیعت گرایانه این است که محقق می تواند شرایط آزمایش را کنترل کند، یعنی کنترل دقیقی بر به اصطلاح ایجاد کند. متغیرهای مستقل،برای شناسایی تأثیر آنها بر متغیرهای وابسته.متغیرهای وابسته در روانشناسی فیزیولوژیکی می توانند هر ویژگی رفتاری یا فیزیولوژیکی باشند، در حالی که متغیرهای مستقل شرایطی هستند که توسط آزمایشگر کنترل می شوند و گاهی اوقات به ارگانیسم تحمیل می شوند. شرایط یعنی مداخله مستقیم(برداشتن قسمت هایی از مغز، تحریک آن یا استفاده از داروهای مختلف)، تغییر محیطی(دما و نور)، تغییر در رژیم تقویتی، مشکل در انجام وظایف یادگیری، مدت محرومیت از غذا، یا عواملی مانند سن، جنس، تبار ژنتیکیو غیره.

برای به حداقل رساندن تفسیر نادرست آزمایشات مرتبط با دشواری تشخیص اثرات مداخلات تجربی از اثرات سایر متغیرها، لازم است معرفی شود. رویه های کنترلبنابراین، برای مثال، هنگام آزمایش اثربخشی یک روش خاص (متغیر مستقل)، از گروه کنترل استفاده می شود. در حالت ایده‌آل، گروه کنترل مانند گروه آزمایش، بدون در نظر گرفتن تأثیر عامل مورد مطالعه، که خود آزمایش برای آن برنامه‌ریزی شده است، مورد بررسی قرار می‌گیرد. از همان حیوان می توان هم در کنترل و هم در آزمایش استفاده کرد، اگر مثلاً لازم باشد رفتار آن قبل و بعد از برداشتن نواحی مغز مقایسه شود. یکی دیگر از روش های کنترل رایج که هدف آن کاهش تأثیر همزمان عوامل متغیر است، اعمال متعادل تأثیرات مختلف در یک حیوان است (مثلاً تزریق داروهای مختلف یا دوزهای متفاوت از همان دارو). یکی دیگر از نکات مهم کنترل، توزیع تصادفی حیوانات در گروه های مختلف است. بهتر است این کار با استفاده از جدول اعداد تصادفی موجود در بسیاری از کتاب های آمار انجام شود (به سادگی بیرون آوردن حیوانات از قفس برای تشکیل یک گروه کافی نیست، زیرا ابتدا ضعیف ترین یا منفعل ترین حیوانات گرفته می شود).

اسناد مشابه

روش های تشخیص میکروارگانیسم ها روش های میکروسکوپی برای مطالعه مورفولوژی باکتری ها و قارچ ها. آماده سازی آماده سازی برای بررسی میکروسکوپی، مطالعه میکروارگانیسم ها به شکل بومی آنها. تهیه آماده سازی های ثابت - اسمیر.

چکیده، اضافه شده در 2011/04/02


مفهوم عفونی شناسی و فرآیند عفونی. علائم اصلی، اشکال و منابع بیماری های عفونی. انواع میکروارگانیسم های بیماری زا. دوره های بیماری عفونی در انسان. روشهای تحقیق میکروبیولوژیکی. روش های رنگ آمیزی اسمیر

ارائه، اضافه شده در 2011/12/25


سیستم روش های تحقیقات زیست پزشکی. روش های الکتروفیزیولوژیک، فتومتریک. گروه های اصلی دستگاه ها و دستگاه های الکترونیک پزشکی. نمودار ساختاری حذف، انتقال و ثبت اطلاعات پزشکی و بیولوژیکی.

چکیده، اضافه شده در 12/11/2008


کارایی روش پیشرونده یک جلسه ای برای درمان پالپیت. طبقه بندی پالپیت، روش های تشخیص آنها. اندیکاسیون ها و موارد منع دفع. ایجاد حفره دسترسی قطع و توسعه محفظه پالپ، پر کردن.

مقاله ترم، اضافه شده در 2015/03/15


روش های تهاجمی الکتروفیزیولوژیک برای مطالعه قلب اجزای ECG و مقادیر طبیعی آنها مبانی تئوری برداری الکتروکاردیوگرافی. قسمت های اصلی الکتروکاردیوگراف. ثبت سیگنال ها در حین برداشتن تدریجی پروب از بطن راست.

ارائه، اضافه شده در 2013/12/28


سونوگرافی چشم. توموگرافی انسجام نوری. روشهای تحقیق الکتروفیزیولوژیک پتانسیل های برانگیخته بصری بررسی فوندوس در فرآیندهای دیستروفیک و التهابی در شبکیه و مشیمیه.

ارائه، اضافه شده در 2013/09/28


بخش های فیزیولوژی مدرن فیزیولوژیست های معروف داخلی. روش ها و انواع تحقیقات فیزیولوژیکی. انواع آزمایش، رویکردهای مفهومی. دوره های سنی رشد کودک (مراحل آنتوژنز). فیزیولوژی سیستم های تحریک پذیر.

سخنرانی، اضافه شده در 01/05/2014


استفاده یکپارچه از روش های بالینی و پاراکلینیکی به عنوان یک اصل کلی برای معاینه بیماران مبتلا به اختلالات روانی. روشهای روانشناسی و الکتروفیزیولوژیک معاینه. پلتیسموگرافی و بررسی رفلکس های عروقی.

کار کنترل، اضافه شده در 2009/08/30


ساختار ویروس نقص ایمنی انسانی چرخه زندگی عامل عفونی مکانیسم تعامل با سلول، پاتوژنز. راه های انتقال و روش های پیشگیری جستجوی داروهای ضد ویروسی که بر اچ آی وی تأثیر می گذارند، روش هایی برای بازگرداندن عملکردهای ایمنی.

مقاله ترم، اضافه شده در 2012/04/28


روشهای اصلی تجویز داروهای بیهوشی در طب بلایا کاهش خطر عوارض جانبی مشخصه بیهوشی استنشاقی. توقف توسعه سندرم تشنج. کاهش اثرات منفی روانی.